Atividade respiratória da microbiota e conteúdo de glicose em resposta à adição de fósforo em solo de Cerrado

Respiratory activity of soil microbiota and glucose content in response to phosphorus addition in Cerrado soil- Brazil

SEÇÃO III - BIOLOGIA DO SOLO

Atividade respiratória da microbiota e conteúdo de glicose em resposta à adição de fósforo em solo de Cerrado¹

Respiratory activity of soil microbiota and glucose content in response to phosphorus addition in Cerrado soil- Brazil

Adão de Siqueira Ferreira^I; Reinaldo Silva de Oliveira^II; Maria Amelia dos Santos^III; Elias Nascentes Borges^III

^IProfessor adjunto II, Microbiologia Agrícola e Ambiental, Universidade Federal de Uberlândia - UFU. CEP 38400-902 Uberlândia (MG). E-mail: [e-mail]

^IIAluno de Graduação do Curso de Agronomia, Instituto de Ciências Agrárias, UFU. E-mail: [e-mail]

^IIIProfessor associado II, Instituto de Ciências Agrárias, UFU. E-mail: [e-mail]

RESUMO

A atividade metabólica dos microrganismos é um dos principais processos reguladores das transformações de nutrientes no solo. No entanto, a atividade microbiana do solo é influenciada por fatores como a disponibilidade de nutrientes, incluindo o P. Este trabalho teve como objetivo avaliar o efeito da adição de P (de 50 a 500 mg kg^-1 de P no solo) na atividade respiratória da microbiota e nos teores de glicose extra e intracelular em um Latossolo Vermelho distrófico fase Cerrado. As amostras de solo foram avaliadas quanto ao C liberado (C-CO₂) pela atividade microbiana; pelo C orgânico total e pela glicose extra e intracelular. Durante o período de incubação (31 dias), a adição de P aumentou a atividade respiratória diária de 6,30 para 23,59 (mg kg^-1 dia^-1 de C-CO₂ no solo), quando comparado com o controle. No entanto, a relação entre C-CO₂ liberado por dia, por unidade de P adicionado, diminuiu, mostrando uma redução da eficiência na utilização do P adicionado. O teor de glicose extracelular no solo foi menor do que o encontrado intracelularmente. Ao final de 31 dias de incubação, o teor de glicose intracelular reduziu-se em decorrência da adição de P no solo, sugerindo maior consumo de glicose pelos microrganismos nas condições de adição do nutriente. Houve correlação negativa (r= -0,98, p < 0,01) entre a respiração diária e a glicose intracelular. Aos 31 dias de incubação, o CO total do solo diminuiu com a adição de 500 mg kg^-1 de P no solo. A estreita relação entre o aumento da atividade e a diminuição de glicose intracelular sugere que a resposta da microbiota à adição de P pode estar associada ao conteúdo do açúcar no solo.

Termos de indexação: glicose, carbono orgânico, respiração do solo, fósforo, Cerrado.

SUMMARY

Metabolic activity of microorganisms is one of the main processes of control on the nutrient transformation in soil. However, the activity of the soil microbiota is affected by various factors such as the available nutrients, including phosphorus. The present work had as objective to show an approach of the effect of phosphorus addition (50 to 500 mg kg^-1 P of dry soil) on the respiratory response of soil microbiota and the amount of extra and intracellular glucose in typic acrustox of Cerrado.The following analyses were carried: amount of C-CO₂ evolved; total organic carbon e; extra and intracellular glucose in soil. During the incubation for 31 days, the respiratory activity (daily activity) increased in 6,30 to 23,59 with phosphorus addition, when compared to the control. However, the ratio between the daily carbon evolved (C-CO₂) and the added phosphorus decreased, showing a reduction of the efficiency of nutrient utilization. The amount of the extracellular glucose was very smaller than the intracellular glucose. At end of 31 days of incubation, the amount of glucose decreased due to phosphorus addition, showing the consumption of sugar by microorganisms under experimental conditions. Negative metabolic correlation (r= -0.97, p<0.01) between the daily respiration and the intracellular glucose was shown. The soil organic carbon decreased only in the treatment with 500 mg P kg^-1of dry soil, being other treatments similar to the control. The strong relation between an increasing of microorganism activity and a decreasing of intracellular glucose occurred, suggesting that the response of soil microbiota to phosphorus addition can be associated to the intracellular glucose content.

Index terms: Glucose, organic carbon, soil respiration, phosphorus, Cerrado.

INTRODUÇÃO

O metabolismo microbiano é um dos principais processos reguladores da transformação de nutrientes no solo. Entre as formas de avaliação da atividade metabólica da microbiota do solo, destaca-se a quantificação de C pela liberação de CO₂, conhecida por respiração do solo (Stotzky, 1965). No entanto, a atividade dos microrganismos está estritamente relacionada com fatores ambientais, como temperatura, umidade, pH, matéria orgânica e nutrientes (Stotzky & Norman, 1961; Atlas & Bartha, 1993). Em particular, o N e o P são os principais nutrientes exigidos no metabolismo devido às demandas estruturais e funcionais das células (Sylvia et al., 1999).

Vários pesquisadores têm relatado que o P é o principal nutriente limitante no solo devido a sua baixa disponibilidade (Ilstedt & Singh, 2005; Gnankambary et al., 2008). Os estudos focalizaram inicialmente as informações sobre a aplicação de P no solo com a produção de matéria seca das plantas, sendo poucos os associados à resposta metabólica da microbiota do solo (Nziguheba et al., 1988; Cleveland et al., 2002; Ilstedt et al., 2003). Além disso, sabe-se que a atividade dos microrganismos depende da quantidade e qualidade da matéria orgânica do solo e da disponibilidade de nutrientes (Cleveland et al., 2002; Ilstedt et al., 2007; Gnankambary et al., 2008).

Atualmente, relatos importantes têm sido feitos a respeito da necessidade de se conhecer a resposta metabólica (liberação de CO₂) do solo em decorrência da preocupação com o aquecimento global. Trabalhos, como de Edward et al. (2007) e Mondini et al. (2007), têm mostrado a importância da adição de nutrientes no solo com relação à liberação de CO₂ dióxido de C. Além disso, o estudo das exigências nutricionais dos microrganismos deve ser prioridade nas relações dos processos biológicos nos ecossistemas, a exemplo do P (Porder et al., 2007; Qiu et al., 2007; Gnankambary et al., 2008).

Este trabalho teve como objetivo avaliar o efeito da adição de P na resposta respiratória da microbiota do solo e nos teores de glicose extracelular e intracelular.

MATERIAL E MÉTODOS

A pesquisa foi realizada com amostra de um Latossolo Vermelho distrófico localizado na Fazenda Experimental (Fazenda do Glória), em área pertencente ao Instituto de Ciências Agrárias da Universidade Federal de Uberlândia, em janeiro de 2007. A amostra foi obtida no período das chuvas, na região de Uberlândia. Na área, a vegetação predominante era de gramíneas com destaque para as espécies pertencentes ao gênero Brachiaria. Subamostras foram realizadas numa área de 600 cm² (30 x 20 cm) por 10 cm de profundidade.

No laboratório, a amostra de solo foi passada em peneira com malha de 3,35 mm. Uma subamostra de 100 g foi seca em estufa a 70 °C por 24 h. O solo seco foi triturado em cadinho de porcelana e enviado ao Laboratório de Análises de Solos (ICIAG-UFU) para caracterização química (Quadro 1). Foram feitas ainda caracterizações físicas, determinando-se umidade conforme Tedesco et al. (1995). A amostra de solo em condições naturais (SCN) foi mantida na geladeira (4 °C) até o dia seguinte, quando foi montado o experimento com P.

Os tratamentos com P foram instalados em frascos (½ L) de vidro com tampa de vedação. Utilizou-se como fonte de P uma solução de Na₂HPO₄.7H₂O em água destilada. Uma alíquota da solução foi adicionada ao solo, acondicionado nos frascos de incubação (100 g de SCN) correspondentes de forma a obter 50, 100, 200, 300, 400 e 500 mg kg^-1 de P no solo seco, em duas repetições. O tratamento controle recebeu água destilada e a umidade do solo foi corrigida a 22 % (p p^-1) em todos os tratamentos. A temperatura ambiente, durante a realização do experimento de atividade microbiana, variou de 21,5 a 24 °C, com temperatura média de 23 °C.

A atividade microbiana foi avaliada pela quantificação do CO₂ liberado, conforme descrito por Stotzky (1965), com modificações. Copos descartáveis (40 mL) contendo 10 mL de hidróxido de sódio 1 mol L^-1 foram colocados dentro de cada frasco de incubação para a captura de CO₂. Os frascos foram hermeticamente fechados e mantidos em temperatura ambiente por 31 dias. A determinação do CO₂ liberado foi realizada no terceiro, décimo, décimo oitavo e trigésimo primeiro dias após a instalação do experimento. Após cada período de incubação, foram retirados os copos plásticos dos frascos e, nestes, colocados 5 mL de BaCl₂.2H₂O 1 mol L^-1 e algumas gotas de fenoftaleína 1 %, sendo o excesso de NaOH titulado com HCl 0,5 mol L^-1. Novos copos plásticos com NaOH foram colocados nos frascos de vidro para subseqüentes períodos de incubação. A amostra do branco foi constituída em frasco sem a porção de solo. A quantidade de C liberada, em mg kg^-1 de C-CO₂ no solo seco, foi calculada pela fórmula:

QC = [(B-A) x M_c x M_HCl ]/ M_s x 2

sendo QC = quantidade de C liberada pelos microrganismos, em mg kg^-1 de C-CO₂ no solo; B = volume de HCl necessário para titular o excedente de NaOH da prova em branco; A = volume de HCl necessário para titular o excedente de NaOH da amostra; M_c = massa atômica do C (12); M_HCl = molaridade da solução de HCl 0,5 mol L^-1; M_s = massa seca do solo incubado (em kg); 2: proporcionalidade de massa na reação entre o C liberado, na forma de CO₂, e o consumo de NaOH (Stotzky, 1965).

As análises de CO total foram feitas no início do experimento (Quadro 1) e após 31 dias de incubação em 2 g de solo seco, conforme Tedesco et al. (1995). Antes da análise, o solo foi homogeneizado e 20 g foram secos a 70 °C por 48 h.

A glicose foi avaliada pelo método enzimático conforme descrito no manual de instruções do fabricante (LABORLAB, Brasil). O método é usado para determinar o nível de glicose no soro e plasma (Henry et al., 1974), sendo feita uma adaptação para determinação do açúcar no solo. A glicose extracelular foi determinada em 20 g de SCN, sendo a porção transferida para Erlenmeyer (125 mL) contendo NaCl 20 mL de 0,5 %. A solução foi agitada por 20 min em temperatura ambiente. A glicose intracelular foi determinada utilizando a mesma porção de solo, lisando as células microbianas pela irradiação no forno microondas por 2 min (Ferreira et al., 1999). Em seguida, as células foram agitadas por 20 min em banho-maria (70 °C). As soluções das duas frações foram filtradas em papel-de-filtro quantitativo (8 µm) e centrifugadas a 6.000 g por 10 min.

Uma alíquota de 500 µL de cada sobrenadante foi transferida para tubo de ensaio contendo 2,5 mL de reativo enzimático (volume total de 3 mL). A dosagem de glicose no extrato foi determinada com auxílio de uma curva-padrão de glicose contendo 0, 5, 10, 50 e 100 µg em 3 mL. Após 12 min de reação, foi feita a leitura em espectrofotômetro a 505 nm. Os resultados foram calculados de forma a obter o teor específico de glicose por unidade de solo seco, com o ajuste de umidade das amostras. A dosagem de glicose foi determinada no início do experimento (Quadro 1) e no final de 31 dias de incubação.

O experimento foi realizado segundo um delineamento inteiramente casualizado. Os resultados obtidos foram submetidos à análise de regressão, e as médias comparadas por teste de médias, quando necessário. Análises de correlação foram feitas entre variáveis para avaliar o grau de associação das informações obtidas a 5 %. Os resultados de atividade microbiana do solo, quanto à utilização do P, foram avaliados pela equação de Michaelis-Menten (White, 2007):

A = (A_maxP)/(k_m + P)

sendo A = atividade microbiana (mg kg^-1 dia^-1de C-CO₂ no solo); A_max = atividade máxima resultante da adição de P no solo; P = P adicionado no solo (mg kg^-1 de P); k_m = constante de Michaelis-Menten (mg kg^-1 de P no solo) em relação à utilização de P e à resposta da atividade microbiana.

RESULTADOS

A adição de P afetou a atividade metabólica dos microrganismos no solo, indicada pela liberação de CO₂ (Figura 1). Em todos os tratamentos, as diferenças de atividade com adição de P foram significativas, quando comparadas ao controle. Essas aumentaram no decorrer do período de incubação. A maior atividade foi verificada no tratamento com 500 mg kg^-1 de P no solo.

Os resultados mostraram que a taxa diária de liberação de C-CO₂ nos tratamentos com P aumentou de 6,30 para 23,59 (mg kg^-1 dia^-1 de C-CO₂ no solo) em relação ao tratamento controle. A equação de regressão, segundo o modelo de Mechaelis-Menten, mostrou excelente grau de ajuste (Figura 2a). Em função da adição de P, a resposta da atividade permitiu obter um valor crítico de utilização de P (319 mg kg^-1 de P no solo). O valor máximo de atividade calculado foi de 37,8 mg kg^-1 dia^-1 de C-CO₂ no solo. Entretanto, as relações entre taxa de liberação diária de CO₂ por unidade de P adicionado diminuíram quando da adição do nutriente. Um elevado valor de R² foi obtido para a equação de regressão dessa relação em conseqüência da adição de P (Figura 2b). Utilizando essa equação para o valor de 319 mg kg^-1 de P no solo, obtém-se uma relação de 0,060 de C-CO₂ por P adicionado.

Os tratamentos com 0 a 400 mg kg^-1 de P no solo não diferiram quanto ao total de C no solo (Quadro 2). Entretanto, no tratamento com a maior dose de P, foi observada uma redução significativa do C orgânico total no final do período de incubação, quando comparado com os demais tratamentos. É importante ressaltar que o período de incubação (31 dias) foi muito curto para esperar reduções mais expressivas de C orgânico total no solo.

Os teores de glicose extracelular e intracelular variaram de menos de 0,01 a 15,90 mg kg^-1 (Quadro 2). O teor de glicose extracelular foi muito abaixo ao encontrado intracelularmente. Além disso, a adição de P ao solo levou a um maior consumo de glicose pelos microrganismos, diminuindo os valores do açúcar intracelular no solo.

Uma alta correlação negativa (r = -0,98) ocorreu entre glicose intracelular e taxa diária de liberação de CO₂, mostrando que a glicose no solo diminui com o aumento da atividade microbiana (Figura 3). A adição de P acima de 300 mg kg^-1 de P no solo teve como conseqüência redução expressiva de glicose intracelular no solo.

DISCUSSÃO

Os resultados demonstram que o P influencia a atividade metabólica da microbiota do solo. Relatos na literatura, como os de Saggar et al. (1998), Demetz & Insam (1999), Cleveland et al. (2002) e Porder et al. (2007), têm mostrado a importância metabólica do P sobre a atividade de microrganismos, destacando que este elemento pode ser o principal fator limitante na ciclagem de nutrientes no solo. Em solos tropicais, essa limitação ocorre, principalmente, devido à tendência de adsorção de aniôn fosfato em compostos de óxidos de Al e Fe, predominante em grupos funcionais de superfície de caulinita em Latossolos (Sanchez, 2002; Ilstedt & Singh, 2005), diminuindo, assim, a disponibilidade do nutriente na fração lábil (Ilstedt et al., 2003; Ilstedt & Singh, 2005).

O metabolismo microbiano está associado a vários processos químicos e biológicos no solo, devendo-se buscar novas formas de avaliação dos atributos envolvidos na resposta bioquímica do solo. As avaliações da resposta metabólica da microbiota mostraram comportamento diferencial em decorrência da adição de P, destacando-se a aplicação de até 319 mg kg^-1 de P no solo como limite de proporcionalidade de resposta metabólica. Deve-se destacar que o efeito de outros fatores reguladores do metabolismo não foi avaliado. Vários autores têm destacado que outros fatores além do P são importantes, a exemplo do C e de N (Howard & Howard, 1993; Schmidt et al., 1999; Teklay et al., 2006; Gnankambary et al., 2008), quando a umidade e a temperatura forem constantes.

A adição de P levou a um decréscimo no teor de glicose intracelular, sugerindo o consumo do açúcar pelos microrganismos. O conteúdo de glicose no solo pode ter sido um dos fatores limitantes da resposta metabólica ao P, principalmente quando a adição foi acima de 319 mg kg^-1 de P no solo. Isso pode ser justificado pela coincidência entre a resposta metábolica (Figura 2) e o decréscimo expressivo de glicose no solo (Quadro 2). Além disso, a estreita relação entre o aumento da atividade e a diminuição de glicose intracelular (Figura 3) sugere que a resposta da microbiota do solo à adição de P pode estar associada ao conteúdo do açúcar no solo. Contudo, o teor de glicose pode estar associado, em parte, à qualidade da matéria orgânica e sua transformação, como destacado por Cleveland et al. (2002), Ilstedt & Singh (2005) e Gnankanbary et al. (2008). Cleveland et al. (2002) relataram a importância da adição de glicose e P na avaliação da atividade da microbiota do solo, sugerindo a relação C/P como fator de grande relevância na regulação dos processos biológicos do solo.

O teor de glicose pode ser um importante atributo bioquímico resultante da atividade metabólica dos microrganismos no solo. A redução de glicose intracelular pode estar associada a demandas metabólicas decorrentes da adição de P, a saber: (1) ao catabolismo para a produção de energia, com a liberação de CO₂; (2) a necessidade anabólica para a síntese estrutural das células; e (3) a síntese de compostos de reserva, como glicogênio (Sylvia et al., 1999). No entanto, pouco se conhece a respeito do metabolismo do solo quanto à demanda de carboidratos associados a estímulos de fatores abióticos, a exemplo do P.

Estudos envolvendo os processos biológicos e a disponibilidade de nutrientes no solo, em especial aqueles que limitam a atividade microbiana, têm sido relatados como base de ampliação dos conhecimentos teóricos, fornecendo suporte à aplicação prática de estratégia de manejo dos solos (Teklay et al., 2006; Zheng et al., 2007; Gnankambary et al., 2008). Assim, trabalhos que envolvem as demandas nutricionais da microbiota, associadas ao potencial dos solos quanto à quantidade e qualidade de matéria orgânica, devem ser valorizados em sistemas agrícolas do Cerrado.

CONCLUSÕES

1. A adição de P aumentou a atividade respiratória avaliada pelo C liberado, quando comparado com a do tratamento-controle, porém, o aumento da atividade não foi proporcional à quantidade adicionada do nutriente.

2. O teor de glicose intracelular foi maior em comparação ao do nível extracelular. A adição de P diminuiu significativamente os teores de glicose intracelular no período de 31 dias de incubação em relação ao do controle.

3. A estreita relação entre o aumento da atividade respiratória e a diminuição de glicose intracelular sugere que a resposta da microbiota do solo à adição de P pode estar associada ao conteúdo de glicose intracelular.

AGRADECIMENTOS

Os autores agradecem aos Laboratórios de Manejo do Solo e Microbiologia Agrícola e Ambiental pelo apoio financeiro na realização dos experimentos.

LITERATURA CITADA

Recebido para publicação em junho de 2007 e aprovado em junho de 2008.

Referências bibliográficas

• ALTAS, R.M. & BARTHA, R. Microbial ecology: Fundamentals and applications. 3.ed. NewYork, The Benjamin-Cummings Publishing Company, 1993. 563p.
• CLEVELAND, C.; TOWNSEND, A.R. & SCHMIDT, S.K. Phosphorus limitation of microbial processes in moist tropical forest: Evidence from short-term laboratory incubations and field studies. Ecosystems, 5:680-691, 2002.
• DEMETZ, M. & INSAM, H. Phosphorus availability in a forest soil determined with a respiratory assay compared to chemical methods. Geoderma, 89:259-271, 1999.
• EDWARD, C.C.; HAYES, M.H.B. & CIAVATTA, C. Organic wastes in soils: Biogeochemical and environmental aspects. Soil Biol. Biochem., 39:1239-1243, 2007.
• FERREIRA, A.S.; CAMARGO, F.A.O. & VIDOR, C. Utilização de microondas na avaliação da biomassa microbiana do solo. R. Bras. Ci. Solo, 23:991-996, 1999.
• GNANKAMBARY, Z.; ILSTEDT, U.; NYBERG, G.; HIEN, V. & MALMER, A. Nitrogen and phosphorus limitation of soil microbial respiration in two tropical agroforestry parklands in the south-Sudanese zone of Burkina Faso: The effects of canopy and fertilization. Soil Biol. Biochem., 40:350-359, 2008.
• HENRY, R.J.; CANNON, D.C. & WINKELMAN, J. Clinical chemistry principies and techniques. 2 ed. NewYork, Harper and Row Publishers, 1974. p.1288.
• HOWARD, D.M. & HOWARD, P.J.A. Relationships between CO₂ evolution, moisture content and temperature for a range of soil types. Soil. Biol. Biochem., 25:1537-1546, 1993.
• ILSTEDT, U.; GIESLER, R.; NORDGREN, A. & MALMER, A. Changes in soil chemical and microbial properties after a wildfire in a tropical rainforest in Sabah, Malaysia. Soil Biol. Biochem., 35:1071-1078, 2003.
• ILSTEDT, U. & SINGH, S. Nitrogen and phosphorus limitations of microbial respiration in a tropical phosphorus-fixing Acrisol (Ultisol) compared with organic compost. Soil Biol. Biochem., 37:1407-1410, 2005.
• ILSTEDT, U.; SINGH, S. & NORDGREN, A. Using perlite as a substrate carrier for measuring microbial avalilable phosphorus by respiration kinetics in soils. Biol. Fert. Soil, 43:503-510, 2007.
• MONDINI, C.; CAYUELA, M.L.; SINICCO, T.; CORDARO, A.R. & SÁNCHEZ-MONEDERO, M.A. Greenhouse gas emissions and carbon sink capacity of amended soil evaluated under laboratory conditions. Soil. Biol. Biochem., 39:1366-1374, 2007.
• NZIGUHEBA, G.; PALM, C.A.; BURESH, R.J. & SMITHSON, P.C. Soil phosphorus factions and adsorption as affected by organic and inorganic sources. Plant Soil, 198:159-168, 1988.
• PORDER, S.; VITOUSEK, P.M.; CHADWICK, O.A.; CHAMBERLAIN, C.P. & HILLEY, G.E. Uplift, erosion, and phosphorus limitation in terrestrial ecosystems. Ecosystems, 10:159-171, 2007.
• QIU, S.; McCOMB, A.J. & BELL, R.W. A mass-balance approach to measuring microbial uptake and pools of phosphorus in nutrient-amemded soils. Soil Biol. Biochem., 39:187-193, 2007.
• SAGGAR, S.; PARFITT, R.L.; SALT, G. & SKINNER, M.F. Carbon and phosphorus transformations during decomposition of pine forest floor with different phosphorus status. Biol. Fert. Soils, 27:197-204, 1998.
• SANCHEZ, P.A. Soil fertility and hunger in Africa. Science, 295:2019-2020, 2002.
• SCHMIDT, I.K.; JONASSON, S. & MICHELSEN, A. Mineralization and microbial immobilization of N and P in Arctic soil in relation to season, temperature and nutrient amendment. Appl. Soil. Ecol., 11:147-160, 1999.
• STOTZKY, G. Microbial respiration. In: BLACK, C.A., ed. Methods of soil analysis. Madison, American Society of Agronomy, 1965. v.2. p.1550-1570.
• STOTZKY, G. & NORMAN, A.G. Factors limiting microbial activities in soil: I. The level of substrate, nitrogen, and phosphorus. Arch. Microbiol., 40:341-369, 1961.
• SYLVIA, D.M.; FUHRMANN, J.J.; HARTEL, P.G. & ZUBERER, D.A. Principles and applications of soil microbiology. New Jersey, Prentice Hall, 1999. 550p.
• TEDESCO, M.J.; BOHNEM, H.; GIANELLO, C.; BISSANI, C.A. & VOLKWEISS, S.J. Análise de solo, plantas e outros materiais. 2.ed. Porto Alegre, Universidade Federal do Rio Grande do Sul, 1995. 174p., (Boletim Técnico, 5)
• TEKLAY, T.; NORDGREN, A. & MALMER, A. Soil respiration characteristics of tropical soils from agricultural and forestry land-uses at Wond Genet (Ethiopia) in response to C, N and P amendments. Soil Biol. Biochem., 38:125-133, 2006.
• WHITE, D. The physiology and biochemistry of prokaryotes . 3.ed. New York, Oxford University Press, 2007. 628p.
• ZHENG, S.; YAO, J.; ZHAO, B. & YU, Z. Influence of agricultural practices on soil microbial activity measured by microcalorimetry. Eur. J. Soil Biol., 43:1-7, 2007.

1

Trabalho financiado pelo Instituto de Ciências Agrárias (ICIAG) da Universidade Federal de Uberlândia - UFU.

Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  13 Jan 2009
• Data do Fascículo
  Out 2008

Histórico

• Recebido
  Jun 2007
• Aceito
  Jun 2008