Detecção do vírus da laringotraqueíte das galinhas no Brasil

Detection of infectious laryngotracheitis virus in chickens in Brazil

Detecção do vírus da laringotraqueíte das galinhas no Brasil

Detection of infectious laryngotracheitis virus in chickens in Brazil

Nilzane Beltrão; Thales Quedi Furian; Joice Aparecida Leão; Rosecler Alves Pereira; Lucas Brunelli de Moraes; Cláudio Wageck Canal

^ICentro de Diagnóstico e Pesquisa em Patologia Aviária (CDPA), Faculdade de Veterinária da Universidade Federal do Rio Grande do Sul (UFRGS),Porto Alegre, RS 91540-000. E-mail: [e-mail]

RESUMO

O propósito deste estudo foi detectar a presença do vírus da laringotraqueíte infecciosa (VLTI) das galinhas em algumas granjas do Brasil. Tecidos da traquéia e suabes foram coletados de 10 lotes de frangos de corte e galinhas de postura com sinais respiratórios. O material foi inoculado em ovos embrionados e as membranas corioalantóides examinadas por histopatologia. Além disso, as amostras foram submetidas à reação em cadeia da polimerase (PCR). Três lotes foram positivos para VLTI por isolamento viral e PCR. Os resultados confirmam a presença do VLTI nas galinhas no Brasil.

Termos de indexação: Vírus da laringotraqueíte infecciosa, PCR, isolamento viral, patologia aviária.

ABSTRACT

A study was carried out in search for evidences of infectious laryngotracheitis virus (ILTV) infections in some Brazilian chicken flocks. Tracheal tissues and swabs were collected from 10 different flocks of layers and broilers displaying respiratory signs of disease. Samples were processes for virus isolation in embryonated eggs and the membranes examined by histopathology. In addition, specimens were examined by polymerase chain reaction (PCR). Three flocks had ILTV positive chickens by virus isolation and PCR. These results confirm the occurrence of ILTV in chickens in Brazil.

Index terms: Infectious laryngotracheitis virus, PCR, virus isolation, avian pathology.

INTRODUÇÃO

O Vírus da Laringotraqueíte Infecciosa (VLTI) das aves, ou Herpesvírus dos Galídeos tipo 1, é um membro da família Herpesviridae, subfamília Alphaherpesvirinae (Bagust & Guy 1997; Roizmann 1995). O VLTI pode causar uma doença respiratória aguda nas aves, caracterizada por dispnéia severa, tosse, expectoração de exsudato muco-sanguinolento e, em casos mais severos, morte em 2 a 3 dias. Taxas de mortalidade de até 70% têm sido reportadas, embora situem-se geralmente entre 10 e 40% (Trist et al. 1996, Bagust & Guy 1997). A forma subaguda da Laringotraqueíte Infecciosa (LTI) caracteriza-se por sinusite, conjuntivite, traqueíte, estertores suaves e baixa mortalidade. A doença tem sido diagnosticada em diversas partes dos Estados Unidos, Europa, Ásia, China e Austrália (Bagust & Guy 1997). No Brasil, apesar de Hipólito et al. (1974) terem relatado o primeiro isolamento de uma amostra do VLTI a partir de aves com sinais respiratórios e intensa traqueíte hemorrágica, a doença não foi mais descrita no País e é considerada exótica pelo Ministério da Agricultura, Pecuária e Abastecimento (MAPA). Mais recentemente, Vargas (1995) detectou anticorpos contra o VLTI em alguns plantéis avícolas do RS, embora não tenha observado sinais da doença aguda, nem tenham sido efetuadas tentativas de isolar o agente. O diagnóstico de LTI é baseado nos sinais clínicos, alterações histológicas e detecção do agente etiológico. Uma variedade de procedimentos diferentes têm sido descritos para a detecção do VLTI, os quais incluem isolamento viral (Hughes & Jones 1988), imunofluorescência direta (Hitchner et al. 1977, Ide 1978, Wilks & Kogan 1979, Goodwin et al. 1991), imunoperoxidase (Guy et al. 1992, Abbas & Andreasen 1996), histopatologia (Pirozok et al. 1957, Bagust & Guy 1997), técnicas de hibridização de DNA (Abbas et al. 1996) e técnicas da Reação em Cadeia pela Polimerase (PCR) (Shirley et al. 1990, Williams et al. 1992). O objetivo deste trabalho foi detectar a presença do VLTI no Brasil a partir de galinhas com suspeita clínica da doença.

MATERIAL E MÉTODOS

Amostras de vírus e materias para exame

Foram utilizadas como controle positivo as linhagens vacinais Laryngo-vac da Solvay Animal Health (Charles City, IL, EUA), e Cover, da Spafas (Storrs, CT, EUA).

Traquéias hiperêmicas apresentando de leve a moderada hemorragia foram coletadas de 7 lotes de frangos de corte e de 3 lotes de galinhas de postura com sinais respiratórios. Esses lotes, provenientes de diferentes empresas avícolas da Região Sul e Sudeste do Brasil, foram analisados por isolamento viral, PCR e histopatologia.

Isolamento viral

Aproximadamente 15 traquéias de cada lote foram picadas juntas, maceradas em gral, diluidas a 1:3 (p:v) em solução salina tamponada com fosfatos (PBS) e centrifugadas por 3 minutos a 1200 x g. Ao sobrenadante obtido foram adicionados 200 UI de penicilina, 2,0 mg de sulfato de estreptomicina e 1000 UI de micostatina por mL. Essa suspensão foi inoculado na membrana corioalantóide (MCA) de 5 ovos embrionados livres de patógenos específicos - " Specific Pathogen Free" (SPF) com 9 dias de incubação, na dose de 0,2 mL/ovo. Cinco ovos inoculados com PBS foram mantidos como controle negativo, sendo examinados diariamente por ovoscopia. Os embriões mortos nas primeiras 12 horas após a inoculação foram descartados. Após sete dias, os ovos foram abertos e observados quanto à presença de morte embrionária e lesões necrótica s tipo " pock" na MCA, as quais foram analisadas por histopatologia.

Para a comparação da sensibilidade entre a PCR e o isolamento viral, cinco ovos foram inoculados com cada uma das diluições (10^-1 a 10^-6) do controle positivo. As doses infectantes para embriões (EID₅₀) foram calculadas de acordo com o método de Spearman-Kärber (Villegas & Purchase 1989).

Reação em Cadeia pela Polimerase (PCR)

Suabes de traquéia foram ressuspensos em tubos contendo 340 mL de TE (10 mM Tris.HCl pH 8,0; 1 mM EDTA). O DNA foi preparado pela digestão com proteinase K, seguida de extração com fenol-clorofórmio (Sambrook et al. 1989). Após precipitação com acetato de sódio e isopropanol, o DNA foi ressuspenso em 50 mL de TE. Para a PCR, foi utilizado um par de iniciadores (ILTV/PCR 5'e ILTV/PCR 3') selecionados por Abbas et al. (1996), correspondentes a um fragmento do gene da timidina quinase. A PCR foi realizada em um volume final de 25 mL, contendo 50 ng de DNA, 20 pmol de cada iniciador (Invitrogen Corporation, Escócia), 2,5 mM MgCl_2, 10 mM Tris-HCl pH 8,5, 50 mM KCl, 0,2 mM de cada dNTP e 1 U de Taq DNA Polimerase. O tempo, número de ciclos e a temperatura da desnaturação, anelamento e extensão foram como descrito previamente (Abbas et al. 1996). Os controles positivos da reação consistiram de DNA extraído da linhagem vacinal e os controles negativos foram suabes de traquéia de aves SPF, ou tampão TE. A sensibilidade da PCR foi determinada utilizando diluições de 10^-1 a 10^-6 da vacina utilizada como controle positivo e titulada em ovos embrionados.

Histopatologia

As MCAs contendo lesões necróticas tipo " pock" , resultantes da inoculação com material suspeito de VLTI, foram fixadas em formol, processadas em álcool, embebidas em parafina, secionadas a 5 mm e coradas com hematoxilina e eosina (HE). O diagnóstico de LTI foi baseado na visualização de corpúsculos de inclusão intranucleares e na presença de sincícios.

RESULTADOS

Dos 10 lotes analisados para a presença do VLTI por isolamento viral, em três 33,3%, foram observadas lesões necróticas tipo " pock" na MCA. Lesões necróticas foram observadas em três de cinco MCA do Lote 1, em quatro MCA do Lote 2 e em apenas uma MCA do Lote 3. Na PCR, foram obtidos produtos de amplificação com aproximadamente 647 pares de bases no controle positivo, na linhagem Cover e em amostras dos três lotes positivos no isolamento viral. Destes lotes positivos, 11 das 45 amostras de suabe de traquéia individuais foram positivas (Fig. 1). No Lote 1, três das 15 amostras foram positivas, no Lote 2, sete amostras foram positivas e, no Lote 3, detectou-se o DNA viral em uma amostra. A sensibilidade da PCR para detecção do DNA do VLTI foi de 6,34 EID₅₀.

A análise histopatológica revelou a presença de corpúsculos de inclusão intranucleares e sincícios em duas traquéias oriundas dos Lotes 1 e 2, não tendo sido observadas alterações em nenhuma amostra do Lote 3. Corpúsculos de inclusão intranucleares foram encontrados em todas as MCAs com lesões examinadas (Fig. 2).

Nos Lotes 4, 5, 6, 7, 8, 9 e 10, não foi detectado VLTI por nenhum dos métodos de diagnóstico utilizados.

DISCUSSÃO E CONCLUSÕES

Neste trabalho, foram utilizados três métodos (isolamento viral, PCR e histopatologia) para determinar a presença do VLTI em aves domésticas no Brasil. Este vírus somente havia sido isolado e identificado no Brasil em 1974, a partir de um lote de galinhas com sinais respiratórios e intensa traqueíte hemorrágica (Hipólito et al, 1974), não tendo sido mais descrito desde então. A PCR para o diagnóstico de doenças virais é relativamente simples, sensível e específica (Scholz et al. 1994). A PCR aplicada para a detecção do vírus a partir de material clínico teve uma sensibilidade semelhante à inoculação em ovos embrionados. No entanto, a PCR tem a vantagem de ser realizada em menos tempo do que esta última (Scholtz et al. 1994, Alexander & Nagy 1997).

Através da análise histopatológica, detectou-se corpúsculos de inclusão intranucleares e sincícios diretamente das traquéias de aves clinicamente suspeitas e em todas as membranas que apresentaram lesões necróticas tipo " pock" . Apesar do diagnóstico do VLTI baseado na demonstração do corpúsculo de inclusão em tecidos ser considerado menos sensível que o isolamento do VLTI (Guy et al. 1992, Keller & Hebel 1992, Bagust & Guy 1997), esses achados histopatológicos são considerados patognomônicos de infecções pelo VLTI (Bagust & Guy 1997), confirmando a especificidade da PCR. Em muitos casos de doença respiratória, onde se suspeita de VLTI, o diagnóstico preliminar diferencial é feito através da análise histopatológica, antes mesmo da detecção do agente ou do isolamento viral (Humberd et al. 2002). No entanto, os corpúsculos de inclusão são usualmente observados somente no estágio inicial da infecção (Van der Heide 1967).

Nos lotes examinados, não foram observados sinais clínicos da doença aguda, sugerindo que se tratavam de isolados de baixa patogenicidade (William et al. 1992). Dessa forma, torna-se difícil o diagnóstico clínico de LTI em galinhas. Os sinais clínicos observados assemelham-se aos das demais doenças respiratórias de aves, como bronquite infecciosa, influenza aviária, micoplasmose e doença de Newcastle (Soares 1977, Scholz et al. 1994). Muitos autores têm evidenciado níveis baixos intermitentes do vírus na traquéia de aves sem sinais clínicos, realçando o papel da LTI na etiologia da doença respiratória (Hughes et al. 1989, Hughes et al. 1991, Humberd et al. 2002).

Em resumo, com o isolamento viral e o protocolo da PCR estabelecido, juntamente com a análise histopatológica, foi possível verificar que o VLTI está presente em nosso meio atualmente, podendo causar grandes perdas econômicas para os plantéis avícolas do nosso País. A partir dos resultados deste trabalho, medidas para o controle e erradicação desta doença deverão ser implementadas no Brasil, para que sejam diminuídos os prejuízos econômicos advindos da menor produtividade e barreiras sanitárias impostas pelos países importadores.

Agradecimentos.- O suporte financeiro foi fornecido pela Fundação de Amparo a Pesquisa do Estado do Rio Grande do Sul (FAPERGS). Nilzane Beltrão, Rosecler Alves Pereira e Lucas Brunelli de Moraes receberam bolsas do Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq). Thales Quedi Furian recebeu bolsa BIC/PROPESQ-UFRGS.

Recebido em 30 de outubro de 2003.

Aceito para publicação em 26 de março de 2004.

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  27 Jul 2004
• Data do Fascículo
  Jun 2004

Histórico

• Recebido
  30 Out 2003
• Aceito
  26 Mar 2004