Mieloma Múltiplo: 50 casos diagnosticados por citometria de fluxo

Multiple Myeloma: 50 cases diagnosed by flow cytometry

ARTIGO ARTICLE

Mieloma Múltiplo: 50 casos diagnosticados por citometria de fluxo

Multiple Myeloma: 50 cases diagnosed by flow cytometry

Mariana F. A. Funari; João C. C. Guerra; Eurípides Ferreira; Jacyr Pasternak; Cleide L. Borovik; Ruth H. Kanayama; Sônia T. Nozawa; Cláudio E. A. Mendes; Ana C. M. Brito; Marcelo H. W. Faulhaber; Nydia S. Bacal

Departamento de Patologia Clinica do Hospital Albert Einstein - São Paulo-SP - Brasil

^{Correspondência}

RESUMO

O Mieloma Mútiplo é uma doença de evolução heterogênea, na qual a maioria dos pacientes recai muito precocemente após o tratamento. Nesse contexto, o objetivo principal deste trabalho é relatar diferentes estratégias de análise do mieloma por citometria de fluxo e sua importância na associação com citogenética no diagnóstico de doença residual. Entre 2.450 casos de doenças onco-hematológicas estudados, de setembro de 1993 a agosto de 2004, foram diagnosticados 50 (2,0%) Mieloma Múltiplo. Foram feitas análises morfológicas e, até o ano de 2000, as imunofenotipagens foram realizadas no citômetro de fluxo XL-MCL (Coulter) pela estratégia tamanho/complexidade, utilizando os anticorpos monoclonais CD19, CD20, CD38, CD45, CD56, HLA-DR, kappa e lambda de superfície e intracitoplasmáticas. A partir de 2001 passaram-se a utilizar painéis seqüenciais através do histograma CD138/Complexidade e anticorpos monoclonais CD19, CD38, CD56, CD117, kappa e lambda intracitoplasmáticas. Mais recentemente foram incluídos no painel os anticorpos CD45, HLA-DR e CD33. A análise do DNA foi realizada por citometria com auxílio do programa Multicycle em nove amostras, sendo que sete apresentaram população aneuplóide. O cariótipo com banda G foi realizado em 25 casos, e a pesquisa de deleção do 13q por FISH em 15. Alterações cromossômicas foram encontradas em 4 casos, sendo duas deleções de 13q confirmadas por FISH. A mudança na estratégia de gates associada à citogenética e ao estudo da cinética do ciclo do DNA permitem melhor identificação de células plasmáticas anômalas, avaliação do prognóstico e detecção de doença residual.

Palavras-chave: Mieloma Múltiplo; citometria de fluxo; citogenética; doença residual.

ABSTRACT

Multiple myeloma is a disease with variable natural history, but a clinical fact is that most of the transplanted patients relapse early after transplantation. Minimal residual disease should be one prognostic factor of transplanted patients that could judge if such patients are at risk for early relapse. We diagnosed 50 multiple myeloma cases from 2450 oncohematologic cancer diseases studied between September 1993 and August 2004 (2% of all cases). Until 2000 these cases were studied using a Coulter Flow Cytometer XL-MCL with monoclonal antibodies against CD19, CD38, CD45, CD56, intra-cytoplasmatic and surface kappa and lambda in a Forward Scatter x Side Scatter gate strategy. After 2001 we performed sequential studies using CD138 histogram complexity and monoclonal antibodies anti CD19, CD38, CD56, CD117, intra-cytoplasmatic kappa and lambda. More recently we included in the antibody pool anti-CD45, anti-HLA-DR and anti-CD33. DNA cytometric studies were performed with the Multicycle software in 9 cases, 7 of those with aneuploidy. G band karyotyping was made in 25 cases and the 13 q deletion was checked in 15 cases. Chromosomal alterations were found in 4 cases including two 13 q deletions, confirmed by FISH. Gate choice, cytogenetic studies and cycle kinetics of DNA are all data that permit better identification of anomalous plasma cells and therefore detection of minimal residual disease, that probably correlates with relapse prognosis.

Key words: Multiple myeloma; flow cytometry; cytogenetics; minimal residual disease detection.

Introdução

O Mieloma Múltiplo (MM) é a segunda doença onco-hematológica mais comum no mundo, perdendo apenas para os linfomas e chegando a representar 10% dos casos.¹ É uma doença caracterizada pela proliferação descontrolada de células plasmáticas na medula óssea com freqüente produção de imunoglobulinas anômalas monoclonais (proteína M). Sua prevalência é maior a partir da quinta década de vida.²

Trata-se de uma doença com evolução heterogênea cuja sobrevida dos pacientes pode variar de alguns meses até mais de uma década.³ Os critérios para o diagnóstico estão bem estabelecidos⁴ (Tabela1). A maioria dos casos evolui com anemia grave, lesões ósseas, insuficiência renal e infecções recorrentes. Esse quadro é resultado de uma infiltração maciça da medula óssea, reabsorção óssea estimulada por citocinas produzidas pelas células tumorais, depósito de cadeias leves monoclonais nos túbulos renais e imunoglobulina monoclonal ineficiente.⁵

O mau prognóstico dos pacientes com MM tem levado a busca de novas opções terapêuticas, incluindo o transplante com células progenitoras. Apesar disso, os pacientes recaem precocemente devido à persistência de células tumorais não visíveis na análise morfológica. Os plasmócitos malignos expressam em sua superfície marcadores que normalmente não estão presentes nos plasmócitos normais.⁶ Dessa forma, a imunofenotipagem auxilia de maneira significativa na identificação de populações de células plasmocitárias anômalas. Nesse contexto, o objetivo principal desse trabalho é relatar diferentes estratégias de análise do MM por citometria de fluxo e sua importância, em associação com o estudo citogenético, na detecção de doença residual.

Casuística e Métodos

No Laboratório Clínico do Departamento de Patologia Clínica do Hospital Albert Einstein, de setembro de 1993 a agosto de 2004, foram analisados por citometria de fluxo 3.583 painéis proliferativos, sendo 2.450 (68,4%) de doenças onco-hematológicas.

Entre os casos de doenças onco-hematológicas foram diagnosticados 50 (2%) novos casos de MM em 49 (98%) amostras de aspirado de medula óssea e uma (2%) de sangue periférico. A idade média ao diagnóstico foi 61,3 anos e a relação masculino/feminino de 2,1:1.

As análises morfológicas foram realizadas em lâminas coradas pelo método pancromático de May-Grünwald-Giemsa. Foram observadas células plasmáticas características de tamanho moderado, núcleo redondo e excêntrico, algumas com nucléolos, cromatina regular e citoplasma basofílico com halo perinuclear (Figura 1). Agrupamentos de plasmócitos displásicos e plasmoblatos também foram visualizados em alguns casos.

Para a imunofenotipagem, no início, as amostras eram preparadas através de separação das células em Ficoll-Hypaque. Posteriormente, por métodos de preparação em Q-PREP (Coulter) ou com tampão hemolítico. As análises imunofenotípicas foram realizadas no citômetro de fluxo XL-MCL (Coulter). No período de 1993 a 2000 foram utilizados os anticorpos monoclonais CD19, CD20, CD45, CD38, CD56, kappa e lambda de superfície e intracitoplasmáticas, numa estratégia de tamanho/complexidade (Figura 2).

A partir de 2001, o painel foi modificado e passou-se a utilizar painéis seqüenciais através do histograma CD138/complexidade e anticorpos monoclonais CD19, CD38, CD56, CD117 (Figuras 3, 4 e 5). As marcações das imunoglobulinas intracitoplasmáticas de cadeia leve foram atreladas à população CD38(+). Nos casos mais recentes foram avaliados também o CD45, o HLA-DR e o CD33 (Figuras 6 e 7). A densidade antigênica foi avaliada através do canal médio de expressão em escala logarítmica obtida nos histogramas.

A análise do conteúdo de DNA foi realizada em nove (18%) amostras que foram marcadas com iodeto de propidium no DNA-PREP (Coulter). A cinética do ciclo do DNA foi analisada no citômetro de fluxo equipado com o programa Multicycle.

O estudo citogenético foi realizado a partir de culturas de 24-48 horas e/ou 72-96 horas com adição de Phorbol (Sigma) como estimulante. O cariótipo com banda G foi realizado em 25 (50%) casos e a pesquisa de deleção do 13q por FISH com a sonda LSI D13S319 (Vysis, Inc.) em 15 (30%) casos.

Resultados

Neste estudo, o CD38 esteve presente em 95,8% dos casos com canal médio de expressão de 51,6. O CD56, em 91,3% dos casos com canal médio de expressão de 22,6. Já o CD19, que normalmente não é expresso nas células do mieloma, foi positivo em apenas 0,4% dos casos com canal médio de expressão de 6,28. O CD117, que pode ser usado como marcador aberrante, foi encontrado em 25,7% dos casos com canal médio de 2,83. A cadeia leve da imunoglobulina intracitoplasmática predominante foi do tipo kappa, positiva em 57,5% dos casos analisados. A expressão de lambda esteve presente em 37,5% dos casos e em dois (5%) casos não foi possível realizar a marcação.

Na análise citogenética tradicional foram detectados quatro (4/25-16%) casos com alteração cromossômica, sendo uma ausência de Y, um com hiperdiploidia e dois com deleção 13q confirmadas por FISH (Figura 8). Na análise do DNA por citometria de fluxo, sete (7/9-77,8%) casos apresentaram população aneuplóide e três deles apresentaram uma quantidade elevada de células em fase de síntese (Figura 9).

Discussão

As células do mieloma, assim como os plasmócitos normais, expressam CD138 e CD38.⁶ Não costumam expressar em sua superfície os antígenos pan-B, como CD19, CD20 e CD22. Nesse aspecto, o MM difere das outras doenças linfoproliferativas de células B que normalmente expressam esses marcadores.⁷

A expressão da imunoglobulina é intracitoplasmática e monoclonal. Esse dado é útil no diagnóstico diferencial. Nos casos de linfomas não Hodgkin essa expressão é apenas de superfície e na macroglobulinemia de Waldenström é tanto intracitoplasmática como de superfície.⁸

Uma outra estratégia com CD38(+) e HLA-DR(-) pode ser útil na identificação de plasmócitos anômalos, já que células T ativadas e subgrupos de células B são CD38(+), mas HLA-DR(+).⁸ A forte expressão do CD38, fraca ou ausente expressão de CD45, com a concomitância do CD56 indicam a malignidade.⁹

Nossos dados confirmam que as células mielomatosas apresentam forte expressão de CD38 e CD56, e ausência ou fraca expressão de CD19 e CD117. Houve também um predomínio de cadeia leve do tipo kappa conforme já descrito na literatura.¹⁰

A identificação de assincronismos maturativos e/ou expressões aberrantes ao diagnóstico é útil na detecção de doença residual. A ausência do CD56 e do CD45,¹¹ expressão do CD20, CD117 e, mais raramente, do CD33 e marcadores de outras linhagens permitem identificação de uma célula neoplásica em 10⁴ a 10⁵ células normais.¹² Essa informação indica a persistência da doença e a necessidade de manutenção da terapia. A Figura 7 mostra um exemplo de histograma com marcação aberrante de CD33.

Foi observado que o percentual de plasmócitos encontrado nos esfregaços de aspirado de medula óssea é freqüentemente superior ao encontrado na análise imunofenotípica por citometria. Isso se deve, em parte, a uma possível diluição na obtenção da amostra e aos prováveis efeitos que o microambiente medular exerce sobre as células do mieloma que acabam dificultando a aspiração.

Deleções ou monossomias envolvendo a região q14 do cromossomo 13 estão diretamente associadas com pior evolução da doença, constituindo fator prognóstico independente.^3,13,14 A metodologia mais sensível para sua detecção é o FISH, porém, pelo alto custo, muitas vezes, ele não pode ser realizado. Dessa forma, muitos casos com alteração deixam de ser identificados. O estudo do cariótipo por citogenética tradicional também é importante, pois outras anormalidades, além da deleção do cromossomo 13, podem estar presentes apresentando outras implicações no prognóstico.

A maioria dos pacientes que fizeram análise do DNA, por citometria, apresentou aneuploidias. Estudos que também utilizam a citometria de fluxo têm demonstrado que grande parte dos mielomas apresenta esse tipo de alteração cromossômica.^15,16,17 O conteúdo de DNA das células neoplásicas, assim como a quantidade de células em proliferação, relacionam-se diretamente com o prognóstico e a evolução da doença. Hiperdiploidias estão associadas com melhor prognóstico, enquanto hipodiploidias indicam pior evolução.^3,18

Quantidades elevadas de células em fase de síntese também condizem com pior evolução^19,20 por traduzirem o índice de proliferação das células neoplásicas. Os valores de referência para esse parâmetro variam de doença para doença de acordo com a capacidade de proliferação da célula envolvida. Os valores significativos para a avaliação do Mieloma Múltiplo ainda não estão bem definidos. Mas, por se tratar de uma doença cujas células apresentam baixa taxa proliferativa, os valores aceitáveis são inferiores aos definidos para outras doenças com altas taxas de proliferação.

Essa quantificação pode ser realizada através de um ensaio imunofluorescente em lâmina que utiliza a bromo-deoxiuridina.²¹ Porém, a técnica adaptada à citometria de fluxo com o iodeto de propidium, utilizada nesse estudo, é mais simples e sensível por avaliar uma grande quantidade de células. Alguns estudos importantes utilizaram esta técnica^19,22,23 e foi constatado que existe grande correlação entre os resultados obtidos através dessas duas metodologias, apesar da maior sensibilidade da técnica que utiliza a citometria.

Conclusões

A nova estratégia de gates seqüenciais adotada a partir de 2001 possibilitou uma melhor avaliação das células plasmáticas. Comparando-se os histogramas 1 e 2 fica evidente a melhor separação dos plasmócitos quando se utiliza o histograma CD138/Complexidade como referência de análise. A introdução de novos anticorpos que possibilitam a avaliação de marcações aberrantes ao diagnóstico possibilita uma melhor monitorização da remissão fenotípica após o tratamento. Mas, de certa forma, a utilização de um painel mais amplo aumenta o custo do exame.

O estudo cinético do DNA, por citometria, deve ser preconizado para todos os casos diagnosticados, pois tem importância na avaliação prognóstica do MM, por quantificar as células em fase S e por identificar aneuploidias. Aneuploidias também podem ser identificadas por citogenética tradicional, mas nem sempre são obtidas metáfases para análise. A citometria é uma metodologia mais sensível para essa análise, pois possibilita o estudo de células em intérfase, além de avaliar um número muito maior de células.²¹

As anormalidades cromossômicas influenciam diretamente na evolução do MM e podem auxiliar na escolha da terapia mais adequada. Por esse motivo, o estudo dessas alterações por citogenética tradicional e por FISH, principalmente da deleção 13q, deve ser realizado sempre. O FISH é uma metodologia mais sensível, porém trata-se de um exame caro que depende da utilização de sondas específicas.

Sendo assim, a mudança na estratégia de gates associada a citogenética e ao estudo da cinética do ciclo do DNA permitem melhor identificação de células plasmáticas anômalas, avaliação do prognóstico e detecção de doença residual nos diversos estágios da terapêutica.

Recebido: 25/10/04

Aceito após modificações: 28/03/05

Avaliação: Editor e dois revisores externos.

Conflito de interesse: não declarado

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  12 Set 2005
• Data do Fascículo
  Mar 2005

Histórico

• Recebido
  25 Out 2004
• Aceito
  28 Mar 2005