Cinética de absorção e frações nitrogenadas em arroz expressando o fator de transcrição OsDof26¹

Absorption kinetics and nitrogen fractions in rice as an expression of the OsDof26 transcription factor

Resumos

Fatores de transcrição Dof podem atuar como ativadores ou repressores transcricionais envolvidos em diversos processos biológicos exclusivos de vegetais, no entanto muitas de suas funções fisiológicas ainda não foram elucidadas. Neste trabalho, plantas de arroz (Oryza sativa L.) expressando o fator de transcrição OsDof26 mostraram alterações na cinética de absorção e metabolismo de nitrogênio (N) quando submetidas aos tratamentos de 0,2 e 2,0 mM de amônio (NH₄⁺) ou nitrato (NO₃^-) em solução nutritiva. O delineamento experimental foi inteiramente casualizado, com quatro repetições, em esquema fatorial 2 × 2 × 2, duas plantas (plantas de arroz não transformadas e uma linhagem de arroz expressando o OsDof26, a L24, duas fontes de N (NO₃^- e NH₄⁺) e duas doses (0,2 e 2,0 mM). Aos 17 dias após a germinação (DAG) foram aplicados os tratamentos e procedeu-se a coleta da solução nutritiva em intervalos de 30 minutos até as 48 horas, afim de estimar os parâmetros cinéticos de absorção de N (V_max, K_m e C_mín). Aos 19 DAG, obteve-se a massa fresca total, sendo parte desse material armazenado para determinação das frações nitrogenadas e açúcares solúveis. A L24 apresentou menor crescimento da parte aérea e raiz em todos os tratamentos analisados quando comparada com a planta não transformada (WT - wild type). e menores teores de NO₃^-, NH₄⁺ e N-amino, afetando assim o metabolismo de N nas plantas transformadas.

Oryza sativa L.; Frações nitrogenadas; Açúcares solúveis; Cinética de absorção

Dof transcription factors can act as transcriptional activators or repressors in several biological processes unique to plants, however many of their physiological functions have not been explained. In this work, rice plants (Oryza sativa L.), expressing the transcription factor OsDof26, showed changes in uptake kinetics and nitrogen (N) metabolism when subjected to treatments of 0.2 and 2.0 mM ammonium (NH₄⁺) or nitrate (NO₃^-) in a nutrient solution. The experimental design was completely randomised, with four replications in a 2 × 2 × 2 factorial, two plants (nontransformed rice plants and the L24 strain of rice, expressing OsDof26; two sources of N (NO₃^- and NH₄⁺); and two dosages (0.2 and 2.0 mM). At 17 days after germination (DAG), the treatments were applied and nutrient solution was then collected at intervals of 30 minutes for 48 hours, in order to estimate the kinetic uptake parameters for N (V_max, K_mand C_min). At 19 DAG, the total fresh weight was obtained, with part of the material being stored to determine the soluble nitrogen fractions and soluble sugars. The L24 strain showed less growth of shoots and roots for all the treatments studied compared to the untransformed plant (WT - wild type). The lower influx of NO₃^-and NH₄⁺ in the L24 resulted in unfavourable kinetic parameters and lower levels of NO₃^-, NH₄⁺ and amino N, thereby affecting the N metabolism in the transformed plants.

Oryza sativa L.; Nitrogen fractions; Soluble sugars; Absorption kinetics

INTRODUÇÃO

O nitrogênio (N) é o nutriente que mais limita a produtividade dos cultivos e o teor de proteína nos grãos de cereais (DECHORGNAT et al., 2011). Diante disso, a eficiência de uso de N (EUN) é considerada crítica para o crescimento, ganho de biomassa, rendimento dos cultivos, bem como a ótima utilização dos fertilizantes aplicados (SHRAWAT; GOOD, 2008).

A EUN pode ser dividida em dois processos: eficiência de absorção, ou seja, habilidade da planta de retirar o N do solo, normalmente presente sob as formas de NO₃^- e NH₄⁺, e eficiência de utilização, que é a habilidade da planta de transferir o N para o grão, predominantemente como proteína (LEA; AZEVEDO, 2006).

Duas estratégias podem ser usadas visando o aumento da eficiência de uso de nutrientes: uma envolve o melhoramento convencional e a seleção assistida por marcadores moleculares, numa tentativa de identificar os genes envolvidos, enquanto a outra utiliza construções genéticas para transformar as plantas e provê-las de ferramentas específicas quanto à eficiência de uso de nutrientes (MCALLISTER; BEATTY; GOOD, 2012).

A eficiência de uso de N é uma característica controlada por múltiplos genes, deste modo, são promissores os estudos de transformação gênica com proteínas regulatórias, também chamadas de fatores de transcrição. Fatores de transcrição Dof (DNA one finger) são exclusivos de plantas e representam uma classe particular de domínio de ligação ao DNA tipo dedo de zinco. Membros desta família têm sido encontrados assumindo diversas funções na regulação de genes e processos específicos das plantas (NOGUERO et al., 2013).

Análises bioquímicas e genéticas revelaram que proteínas de domínio Dof funcionam como ativadores ou repressores transcricionais envolvidos em diversos processos biológicos em vegetais. Embora muitas funções das proteínas Dof ainda não tenham sido elucidadas, é evidente que esses fatores desempenham funções críticas na regulação transcricional relacionada ao desenvolvimento das plantas (YANAGISAWA et al, 2004).

Plantas de Arabidopsis superexpressando o gene Dof1 de milho mostraram aumento na produção de esqueletos de carbono (C) e na assimilação do N absorvido, bem como melhor desempenho sob condições de baixa disponibilidade deste nutriente (YANAGISAWA et al., 2004). Por outro lado, estes mesmos autores relatam efeito inibitório da proteína Dof2de milho sobre a Dof1 na expressão da enzima fosfoenolpiruvato carboxilase (PEPC), indicando uma possível ação conjunta destes dois fatores de transcrição no controle da expressão do gene da PEPC (YANAGISAWA; SHEEN, 1998).

Uma análise filogenética entre todos os membros desta família de fatores de transcrição em arroz mostra uma alta similaridade entre o OsDof25 e o OsDof26 (SANTOS; SOUZA; FERNANDES, 2012), indicando uma possível interação entre estes dois fatores de transcrição no controle da expressão gênica, a exemplo do que ocorre entre o Dof1 e Dof2 de milho.

Diante disso, este trabalho teve como objetivo avaliar se plantas de arroz transformadas expressando o fator de transcrição OsDof26 apresentam alterações na sua cinética de absorção e metabolismo de N quando submetidas a condições de baixa e alta disponibilidade de NH₄⁺ ou NO₃^- na solução.

MATERIAL E MÉTODOS

A construção gênica para expressão do OsDof26 em plantas de arroz foi obtida por meio da tecnologia Gateway de clonagem (Invitrogen). O OsDof26 foi amplificado do genoma nuclear usando os seguintes iniciadores: 5'-AAAAAGCAGGCTGCATGCAGGAGGCGGGGCGA-3' e 5'- GGGGACCACTTTGTACAAGAAAGCTGGGT-3'.

O gene OsDof26 foi clonado no vetor pDONR221 (Invitrogen) usando o kit Gateway BP Clonase II Enzyme Mix seguindo as recomendações do fabricante. O vetor resultante pENTR-OsDof26 foi usado em uma recombinação múltipla com os vetores pENTR-UBIL, pENTR-3xHA e o vetor de expressão pH7m34GW, este último contendo o gene de resistência a higromicina usado na seleção das plantas transformadas. A reação de recombinação múltipla foi realizada usando o kit LR Conase II Plus Enzyme Mix (Invitrogen) seguindo as recomendações do fabricante.

O cassete de expressão obtido contém o gene OsDof26 sobre o controle do promotor forte da ubiquitina 1 de milho (UBIL:OsDof26:3xHA). A transformação de plantas de arroz foi realizada baseada no protocolo de Toki (2006). As linhagens foram cultivadas em casa de vegetação até a terceira geração para obtenção de plantas homozigotas.

O experimento foi conduzido em câmara de crescimento com radiação de 500 µmol fótons m-2 s-1 (fluxo de fótons fotossintéticos), fotoperíodo de 14h/10h (luz/escuro), umidade relativa do ar de 80% e temperatura média de 28 °C/24 °C (diurna/noturna). Foram utilizadas sementes da variedade de arroz Nipponbare (Oryza sativa L. ssp. Japonica) superexpressando o fator de transcrição OsDof26 (linhagem 24 - L24) e sementes de plantas não transformadas (WT) da mesma variedade.

As sementes foram primeiramente tratadas em solução de hipoclorito de sódio (2%) durante 10 minutos, depois lavadas repetidas vezes em água destilada e germinadas sobre gaze em vasos de 1,7 L contendo água destilada. Cinco dias após a germinação (DAG), 4 plântulas uniformes foram transferidas para potes de 700 mL contendo solução de Hoagland e Arnon (1950) modificada a ¼ força iônica (FI) com 2,0 mM de N (1,5 mM na forma de N-NO₃- e 0,5 mM N-NH₄⁺). Trocas de solução foram realizadas a cada três dias e o pH foi mantido em 5,7.

Aos 14 DAG as plântulas receberam solução a ½ FI sem N durante 72 horas, procedimento realizado para aumentar a capacidade de absorção do nutriente durante a cinética de absorção. Aos 17 DAG foram aplicados os tratamentos de 0,2 e 2,0 mM de N-NO₃^- ou N-NH₄⁺, sendo o NO₃^- fornecido na forma de KNO₃ e o amônio de (NH4)2SO4. Plantas transformadas e não transformadas foram submetidas às mesmas soluções nutritivas. Foram realizadas coletas de 1,0 mL de solução nutritiva, sem reposição, em intervalos de 30 minutos para os tratamentos de 0,2 mM de N até às 24 horas e coletas em intervalos de 1 hora para os tratamentos de 2,0 mM de N até às 48 horas. Aos 19 DAG, as plantas foram separadas em parte aérea e raízes para determinação da massa fresca total.

Os parâmetros cinéticos de absorção (Influxo, Vmax e Km) de N-NO₃^-e N-NH₄⁺ foram determinados a partir da diminuição da concentração destes íons na solução nutritiva em função do tempo, conforme descrito por Claassen e Barber (1974). O ajuste das curvas de depleção e os cálculos dos parâmetros cinéticos foram realizados empregando-se o software Cineticawin 1.0 (UFV). O poder de absorção (α) foi calculado pela razão α = V_max /K_m e o C_mín foi estimado a partir das últimas coletas de solução nutritiva, quando os teores de N não sofreram variações.

Amostras de 0,5 g do material fresco coletado da parte aérea ou raízes foram homogeneizadas em etanol 80%, e após a extração alcoólica foi feita a partição com clorofórmio. A fração solúvel obtida foi utilizada para a determinação dos teores de N-amino livre (YEMM; COCKING, 1955), N-NO3- (CATALDO et al, 1975), N-NH₄⁺ (FELKER, 1977) e açúcares solúveis (YEMM; WILLIS, 1954).

O delineamento experimental foi inteiramente casualizado em um fatorial (2 linhagens x 2 fontes de N x 2 doses) com quatro repetições. Os dados foram submetidos à análise de variância com aplicação do teste F e as médias comparadas entre si pelo teste de Tukey p ≤ 0,05 por meio do programa Sisvar para Windows versão 4.0 (FERREIRA, 2000) ou pelo erro padrão.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

As plantas transformadas para superexpressão do fator de transcrição OsDof26 (L24) mostraram maior Km em todos os tratamentos analisados, com destaque para a dose de 0,2 mM de N-NO₃^- ou N-NH₄⁺ (Tabela 1). Por meio do valor de Km é possível verificar a afinidade dos carreadores pelo nutriente a ser transportado, sendo este o parâmetro mais relevante na descrição dos sistemas de transporte (ZHANG; RENGEL; MENEY, 2009). O maior Km observado na L24 representa uma perda de afinidade dos seus carreadores para o transporte de NO₃^- ou NH₄⁺ presente na solução.

Tabela 1
Parametros cineticos (Km, Vmáx, α e Cmín) de absorção em plantas de arroz L24 e WT, submetidas as doses de 0,2 e 2,0 mM de N-NO₃-ou N-NH₄⁺ apos 72 h de privação de N

Fonte de N	Dose mM	Kmμmol L-1		Vmáxμmol g-1h-1		α (Vmáx/Km) L g-1h-1		Cmínμmol L-1
		WT	L24	WT	L24	WT	L24	WT	L24
N-NH4+	0,2	37,81b	51,87 a	14,42 a	13,76 a	0,38 a	0,26 b	25,76 b	34,72 a
	2,0	1096,01 b	1173,20 a	57,00 a	50,81 a	0,05 a	0,04 a
N-NO3-	0,2	48,44 b	72,13 a	11,29 a	8,19 b	0,23 a	0,11 b	18,54 a	22,61 a
	2,0	1185,87 b	1369,81 a	49,97 a	33,53 b	0,04 a	0,02 b
C.V%		5,0		10,7		7,8		8,5

• ^b
  Medias seguidas da mesma letra minúscula na linha não diferem estatisticamente pelo teste de Tukey p ≤0,05 de significancia

A Vmáx variou pouco entre L24 e WT (Tabela 1). Apenas nos tratamentos com N-NO₃^-, observou-se redução da V_máx em L24 que pode ser reflexo de uma menor quantidade de proteínas de transporte para este ânion. Esta é uma característica desfavorável, uma vez que plantas que apresentam menor V_máx mostram redução na capacidade de transporte de nutrientes (SANTOS et al, 2011).

Plantas de arroz transformadas para a superexpressão do fator de transcrição OsDof25, mostraram parâmetros cinéticos mais favoráveis (V_máx e K_m) em detrimento da WT quando submetidas a dose de 0,2 mM de NO₃^- ou NH₄⁺ em solução nutritiva (SILVA, 2012). Resultado contrário foi obtido em nosso trabalho, em que o aumento de expressão do OsDof26 gerou plantas com parâmetros cinéticos desfavoráveis em relação a WT tanto sob baixo, quanto alto suprimento de N (Tabela 1), indicando um possível efeito inibitório desse gene sobre o OsDof25.

A combinação de alto valor para Vmáx e baixos valores para K_m e C_mín , juntamente com maior crescimento radicular, são características desejáveis numa espécie, pois representam maior eficiência na absorção do nutriente (LI et al., 2007). No entanto, plantas da L24 conduzidas com 0,2 ou 2,0 mM de N-NH₄⁺ ou N-NO₃^- mostraram maior Km e uma tendência de menor V_máx. A análise conjunta dos parâmetros cinéticos por meio do poder de absorção (α) corrobora a menor capacidade de absorção de N por L24 (Tabela 1).

O C_mín representa a concentração do nutriente em solução onde o influxo líquido é igual a zero e seu valor pode variar consideravelmente entre espécies de plantas e em diferentes condições ambientais (HU et al, 2010). Foram encontrados os valores de 25,76 e 34,72 pmol L^-1 para a WT e L24, respectivamente. Este resultado, mais uma vez, indica que L24 mostrou menor capacidade de absorver o N da solução nutritiva.

Uma vez obtida a concentração do nutriente em solução a cada tempo de coleta, foram construídas curvas de influxo para os tratamentos de 0,2 e 2,0 mM de N-NH₄₊ e N-NO₃^-. Foi observado maior influxo de N por WT (Figura 1). Estes dados corroboram os parâmetros cinéticos encontrados, em que L24 mostrou menor afinidade a N-NH₄⁺ ou N-NO₃^-, independente da dose de N.

Figura 1
Influxo de N em plantas submetidas às doses de 0,2 mM (a, b) e 2,0 mM (c, d) de N-NH₄⁺ ou N-NO₃ na solução nutritiva, após 72 h de privação de N. Barras representam o erro padrão das médias

Em todos os tratamentos, a L24 mostrou menor crescimento da parte aérea (Tabela 2). As raizes mostraram comportamento similar, no entanto, não foi observado diferença estatística no tratamento de 2,0 mM de N-NO₃^-(Tabela 2). O aumento de expressão do OsDof26 gerou plantas com menor taxa de crescimento e com alterações na capacidade de absorção de N (Tabela 1, Figura 1).

Tabela 2
Massa fresca (g planta^-1) de parte aérea e raízes e razão raiz/parte aérea em plantas da L24 (35S-.OsDof26-.3xHA) e a parental não transformada (WT), submetidas às doses de 0,2 e 2,0 mM de N-N0₃^- ou N-NH₄⁺ após 72 h de privação de N

Fonte	Dose	Parte aérea		Raiz			Razão R/PA
		WT	L24	WT	L24		WT	L24
		..............................................g planta-1..............................................
N-NH4+	0,2 mM	2,10a	1,71 b	1,44 a	0,85 b		0,69 a	0,50 b
	2,0 mM	3,33 a	2,67 b	1,35 a	0,72 b		0,40 a	0,26 b
N-NO3-	0,2 mM	2,76 a	1,49 b	1,51 a	0,71 b		0,56 a	0,48 b
	2,0 mM	3,08 a	2,47 b	1,13 a	1,09 a		0,37 b	0,46 a
C.V%		10,55		14,34			10,76

• ^a
  Médias seguidas da mesma letra minúscula na linha não diferem estatisticamente pelo teste de Tukey p ≤0,05 de significância

A proteína Dof1 de milho em Arabidopsis pode atuar em funções críticas na regulação transcricional relacionada ao desenvolvimento das plantas, aumentando a expressão de genes relacionados à síntese de esqueletos de C, especialmente a piruvato quinase (PK) e PEPC (YANAGISAWA et al, 2004). Dados recentes mostraram que plantas de arroz superexpressando o OsDof25, ortólogo de Dof1 de milho, podem apresentar maior biomassa sob condições de estresse nutricional (deficiência ou baixo suprimento de N) (SILVA, 2012).

A superexpressão de OsDof26, provável ortólogo de Dof2de milho, pode ter regulado negativamente a expressão de genes envolvidos na síntese de esqueletos de C que estão diretamente relacionados à assimilação de N. O menor crescimento de L24 sugere que a ocorrência de alterações no metabolismo de C e N podem ter prejudicado o desenvolvimento das plantas transformadas.

A razão raiz/parte aérea (R/PA) sofreu alterações entre as plantas estudadas (Tabela 2), onde foi observada uma tendência de menor valor da razão para a L24 o que estaria associado a um menor crescimento do sistema radicular. Alterações na arquitetura e crescimento de raízes podem beneficiar ou prejudicar a captação de nutrientes pelas plantas (HERDER et al., 2010).

O pH da solução nutritiva foi monitorado a partir do momento em que foram aplicados os tratamentos. A L24 mostrou diminuição na capacidade de acidificação da solução quando conduzida com 0,2 e 2,0 mM de N-NH₄⁺. Também foi observada uma menor capacidade de alcalinização da solução quando as plantas foram submetidas a 0,2 e 2,0 mM de N-NO₃^- (Figura 2).

Figura 2
Valor de pH na solução nutritiva em plantas de arroz, L24 e WT, submetidas às doses de 0,2 mM (a) e 2,0 mM (b) de N-NO₃^- ou N-NH₄⁺ após 72 h de privação de N. Barras representam o erro padrão das médias

O fato de L24 ter mostrado baixo crescimento contribuiu para a sua menor capacidade de absorção de N (Tabela 2) e consequentemente pouca variação de pH foi observada. Entretanto, este resultado associado aos dados obtidos na cinética de absorção (Tabela 1) ratifica o menor influxo de N por L24, uma vez que para os cálculos de parâmetros cinéticos é considerada a massa de raízes das plantas, eliminando-se o efeito de diferentes massas frescas de raízes obtidas pela WT e L24.

A L24 apresentou menor teor de N-NO₃^- em relação a WT nos tratamentos de 0,2 e 2,0 mM de N-NO₃^- na parte aérea e raiz (Figura 3a e b), sendo este resultado mais evidente na raiz no tratamento de 2.0 mM N-NO₃^-. A marcante redução no influxo deste ânion pelas plantas transformadas (Figura 1d) foi responsável pela diminuição dos teores de N-NO₃^- na parte aérea e raiz de L24 (Figura 3a e b).

Figura 3
Teores de N-NO₃^- (a, b) e N-NH₄⁺(c, d) na parte aérea e raízes de plantas de arroz L24 e WT, submetidas às doses de 0,2 e 2,0 mM de N-NO₃^- ou N-NH₄⁺após 72 h de privação de N. Letras indicam diferença entre as linhagens dentro de cada tratamento, Tukey p ≤ 0,05 de significância

A L24 também apresentou menores teores de N-NH₄⁺ no tratamento de 0,2 mM N-NH₄⁺ na raiz e

2.0 mM N-NH₄+ na parte aérea e raiz (Figura 3c e d). Este resultado corrobora os dados encontrados para influxo de N-NH₄+ (Figura 1a e c) e sugere uma menor capacidade de redução de NO₃^- a NH₄⁺ por L24 quando comparado a WT, principalmente no sistema radicular.

O NH₄⁺ absorvido por essas plantas não deve ser acumulado no tecido vegetal, pois é responsável por sintomas de toxidez, que se expressam principalmente pelo baixo crescimento (JAMPEETONG; BRIX, 2009). Dessa forma, esse íon precisa ser assimilado em esqueletos de C e transportado na forma de aminoácidos, principalmente para a parte aérea.

Os teores de N-amino diminuíram na parte aérea e raiz em L24 (Figura 4). Foi observado que, independente do tratamento de N-NO₃^- ou N-NH₄⁺ aplicado, L24 mostrou menor conteúdo de aminoácidos totais, sendo este resultado mais evidente na dose de 2,0 mM de N (Figuras 4a e b). A menor capacidade de absorção de N por L24, evidenciado pelos menores valores de influxo (Figura 1) e acúmulo de N-NO₃^- ou N-NH₄⁺, resultou em menores teores de aminoácidos totais nestas plantas.

Figura 4
Teores de N-amino (a, b) e açúcares solúveis (c e d) na parte aérea e raízes de plantas de arroz, L24 e WT, submetidas às doses de 0,2 e 2,0 mM de N-NO₃^- ou N-NH₄⁺ após 72 h de privação de N. Letras indicam diferença entre as linhagens dentro de cada tratamento, Tukey p ≤ 0,05 de significância

Quanto aos teores de açúcares solúveis sabe-se que nos vegetais estes podem atuar como fonte de energia prontamente disponível para o metabolismo celular e como fonte de esqueletos de C utilizados na síntese de ácidos orgânicos para assimilação do N absorvido (XU; FAN; MILLER, 2012).

Os teores de N-amino e açúcares solúveis mostraram relação inversa, principalmente na dose de 2,0 mM de N-NO₃^- ou N-NH₄⁺ em que L24 apresentou sensível aumento no teor de açúcares solúveis quando comparado a WT (Figuras 4c e d). O maior ou menor teor de N-amino e açúcares solúveis é fruto do equilíbrio existente entre esqueletos de C e N absorvido pelo vegetal sendo extensivamente relatados em trabalhos com diferentes espécies de plantas (BORGES et al., 2006; OLIVEIRA et al., 2011).

O maior teor de açúcares solúveis observado em L24 sugere uma menor capacidade destas plantas em incorporar o N absorvido em esqueletos de C, afetando assim a formação de aminoácidos essenciais para o desenvolvimento do vegetal.

A análise conjunta dos dados obtidos revelou a menor capacidade de L24 em absorver e assimilar o N disponível em solução, consequência de alterações causadas no metabolismo de C e N nas plantas transformadas. Dessa forma, os resultados mostram que o OsDof26 é possivelmente um repressor da absorção e assimilação de N pelas plantas, atuando de forma antagônica a genes que estimulam a absorção de N como o ZmDof1 (YANAGISAWA et al., 2004) e OsDof25 (SANTOS; SOUZA; FERNANDES, 2012). No entanto, ainda são necessários outros estudos que caracterizem de forma mais detalhada, os meios pelos quais a expressão deste fator de transcrição pode afetar a regulação de genes-chave envolvidos no metabolismo de C e N em plantas de arroz.

CONCLUSÕES

1. Plantas de arroz superexpressando o fator de transcrição OsDof26, L24, mostram menor massa fresca de parte aérea e raiz independente da dose e fonte de N aplicado;

2. L24 exibe parâmetros cinéticos de absorção de N desfavoráveis, com maior valor de K_m e C_min, além de menor capacidade de assimilação de N.

• Pesquisa financiada pela Capes e CNPq

AGRADECIMENTOS

Ao Curso de Pós-Graduação em Ciência do Solo (CPGA-CS) da Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro (UFRRJ), ao estudante de doutorado Vinicius Miranda de Souza pela obtenção das plantas transformadas, ao CNPq e à FAPERJ pelo fomento.

REFERÊNCIAS

• BORGES, E. A. et al Acúmulo e remobilização de nitrogênio em variedades de milho. Revista Caatinga, v. 19, n. 3, p. 278-286, 2006.
• CATALDO, D. et al Rapid colorimetric determination of nitrate in plant tissue by nitration of salicylic acid. Communication in Soil Science and Plant Analysis, v. 6, n. 1, p. 853-855, 1975.
• CLAASSEN, N.; BARBER, S. A. A method for characterizing the relation between nutrient concentration and flux into roots of intact plants. Plant Physiology, v. 54, n. 4, p. 564-568, 1974.
• DECHORGNAT, J. et al. From the soil to the seeds: the long journey of nitrate in plants. Journal of Experimental Botany, v. 62, n. 4, p. 1349-1359, 2011.
• FELKER, P. Microdetermination of nitrogen in seed protein extracts with the salicylate- dichloroisocyanurate color reaction. Analytical Chemistry, v. 49, n. 1, p. 1080, 1977.
• FERREIRA, D. F. Análises estatísticas por meio do SISVAR para Windows versão 4.0. In: REUNIÃO ANUAL DA REGIÃO BRASILEIRA DA SOCIEDADE INTERNACIONAL DE BIOMETRIA, 45, 2000, São Carlos,SP. Anais... São Carlos: UFSCar, 2000. p. 255-258.
• HERDER, G. D. et al The roots of a new green revolution. Trends in Plant Science, v. 15, n. 11, p. 1360-1385, 2010.
• HOAGLAND, D. R.; ARNON, D. I. The water-culture method for growing plants without soil. California Agricultural of Experimental Station Bull, v. 347, n. 1, p. 1-32, 1950.
• HU, Y. et al. Genotypic differences in root morphology and phosphorus uptake kinetics in Brassica napus under low phosphorus supply. Journal of Plant Nutrition, v. 33, n. 6, p. 889-901, 2010.
• JAMPEETONG, A. E.; BRIX, H. Effects of NH4+ concentration on growth, morphology and NH4+ uptake kinetics of Salvinia natans. Ecological Engineering, v. 35, n. 5, p. 695-702, 2009.
• LEA, P. J.; AZEVEDO, R. A. Nitrogen use efficiency. Uptake of nitrogen from the soil. Annals of Applied Biology, v. 149, n. 3, p. 243-247, 2006.
• LI, Y. et al. Genotypic variation of rice in phosphorus acquisition from iron phosphate: contributions of root morphology and phosphorus uptake kinetics. Russian Journal of Plant Physiology, v. 54, n. 2, p. 230-236, 2007.
• MCALLISTER, C. H.; BEATTY, P H.; GOOD, A. G. Engineering nitrogen use efficient crop plants: the current status. Plant Biotechnology Journal, v. 10, n. 9, p. 1011-1025, 2012.
• NOGUERO, M. et al The role of the DNA-binding One Zinc Finger (DOF) transcription factor family in plants. Plant Science, v. 209, n. 1, p. 1-14, 2013.
• OLIVEIRA, S. A. S. et al. Partição de nitrogênio em variedades de milho (Zea mays L.) com a aplicação foliar de microorganismos eficazes e nitrato. Revista Universidade Rural Série Ciências da Vida, v. 31, n. 1, p. 57-69, 2011.
• SANTOS, L. A. et al Nitrate uptake kinetics and metabolic parameters in two rice varieties grown in high and low nitrate. Journal of Plant Nutrition, v. 34, n. 7, p. 9881002, 2011.
• SANTOS, L. A.; SOUZA, S. R.; FERNANDES, M. S. OsDof 25 expression alters carbon and metabolism in Arabidopsis under high N-supply. Plant Biotechnology Reports, v. 6, n. 4, p. 327337, 2012.
• SHRAWAT, A. K.; GOOD, A. G. Genetic engineering approaches to improving nitrogen use efficiency. ISB News Report, p. 1-5, May 2008.
• SILVA, Renata Aparecida Costa. Efeito da superexpressão do fator de transcrição OsDof25 sobre a eficiência de absorção de nitrogênio em Oryza sativa L 2012. 52 f. Dissertação (Mestrado em Agronomia, Ciência do Solo) - Instituto de Agronomia, Departamento de Solos, Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, RJ, 2012.
• TOKI, S. et al. Early infection of scutellum tissue with Agrobacterium allows high-speed transformation of rice. The Plant Journal, v. 47, n. 6, p. 969-976, 2006.
• XU, G.; FAN, X. ; MILLER, A. J. Plant nitrogen assimilation and use efficiency. Annual Review of Plant Biology, v. 63, n. 1, p. 153-182, 2012.
• YANAGISAWA, S. et al. Metabolic engineering with Dof1 transcription factor in plants: improved nitrogen assimilation and growth under low-nitrogen conditions. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America (PNAS), v. 101, n. 20, p. 7833-7838, 2004.
• YANAGISAWA, S.; SHEEN, J. Involvement of maize Dof zinc finger proteins in tissue-specific and light-regulated gene expression. The Plant Cell, v. 10, n. 1, p. 75-89, 1998.
• YEMM, E. W.; COCKING, E. C. The determination of amino-acid with ninhydrin. Analytical Biochemistry, v. 80, n. 1, p. 209-213, 1955.
• YEMM, E. W.; WILLIS, A. J. The estimation of carbohydrate in plants extracts by anthrone. Biochemistry, v. 57, n. 3, p. 508514, 1954.
• ZHANG, Z.; RENGEL, Z., MENEY, K. Kinetics of ammonium, nitrate and phosphorus uptake by Canna indica and Schoenoplectus validus. Aquatic Botany, v. 91, n. 2, p. 71-74, 2009.

Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  Apr-Jun 2015

Histórico

• Recebido
  09 Mar 2014
• Aceito
  16 Dez 2014