Persistência de herbicidas dessecantes aplicados em milho transgênico sobre Trichogramma pretiosum Riley, 1879 (Hymenoptera: Trichogrammatidae)¹

Persistence of desiccant herbicides applied to transgenic maize on Trichogramma pretiosum Riley, 1879 (Hymenoptera: Trichogrammatidae)

RESUMO

O milho é um dos cereais mais cultivados no mundo e para a obtenção de altas produtividades é imprescindível o controle adequado das plantas daninhas. Contudo, a utilização de herbicidas pode comprometer os efeitos benéficos da ação dos inimigos naturais, entre eles o parasitoide de ovos Trichogramma pretiosum. O objetivo deste trabalho, foi estimar a duração da atividade nociva de herbicidas dessecantes aplicados em milho transgênico ao parasitoide T. pretiosum através de testes de persistência. Foram realizados bioensaios em laboratório, expondo-se os adultos do parasitoide aos resíduos dos herbicidas, utilizando-se as metodologias propostas pela "International Organization for Biological Control of Noxious Animals and Plants" (IOBC). Os herbicidas foram pulverizados sobre as folhas das plantas de milho transgênico, que foram levadas ao laboratório para a confecção de gaiolas de exposição, onde adultos de T. pretiosum foram expostos aos 3; 10; 17; 24 e 31 dias após esta aplicação. Foi utilizado o delineamento inteiramente casualizado, com quatro repetições para cada tratamento. A redução do parasitismo em relação à testemunha foi utilizada para classificar os agrotóxicos quanto à seletividade e, posteriormente quanto à persistência. Os herbicidas dessecantes à base de sal de isopropilamina (Glifosato^® Atanor 48, Gli-Up^® 480 SL, Roundup^® Original, Roundup^® Transorb, Roundup^® WG, Shadow^® 480 SL, Stinger^® e Trop^®), sal de potássio (Zapp^® Qi 620) e de sal de amônio (Finale^®) foram considerados de vida curta, tendo menos de cinco dias de atividade nociva sobre o parasitoide. Assim, liberações inundativas de T. pretiosum podem ser realizadas aos três dias após pulverização destes herbicidas dessecantes.

Palavras-chave:
Controle biológico; Controle químico; Parasitoide de ovos; Zea mays

ABSTRACT

Maize is one of the most cultivated cereals in the world, and in order to obtain high yields adequate weed control is essential. However, the use of herbicides may compromise the beneficial effects of the actions of natural enemies, among them the egg parasitoid Trichogramma pretiosum. The aim of this study was to estimate the duration of the harmful activity of desiccant herbicides applied to transgenic maize on the parasitoid T. pretiosum through persistence testing. Bioassays were carried out in the laboratory, where the adult parasitoids were exposed to herbicide residue following the methods proposed by the 'International Organisation for Biological Control of Noxious Animals and Plants1 (IOBC). The herbicides were sprayed onto the leaves of plants of transgenic maize, which were taken to the laboratory for the construction of cages where adults of T. pretiosum were exposed to 3, 10, 17, 24 and 31 days after application. A completely randomised design was used with four replications per treatment. The reduction in parasitism relative to the control was used to classify the pesticides for selectivity and then for persistence. The desiccant herbicides based on isopropylamine salt (Glifosato^® Atanor 48, Gli-Up^® 480 SL, Roundup^® Original, Roundup^® Transorb, Roundup^® WG, Shadow^® 480 SL, Stinger^® and Trop^®), potassium salt (Zapp® Qi 620) and ammonium salt (Finale®) were considered to be short-lived, with less than five days of harmful activity against the parasitoid. Extremely large releases of T. pretiosum can therefore be carried out three days after spraying these desiccant herbicides.

Key words:
Biological control; Chemical control; Egg parasitoid; Zea mays

INTRODUÇÃO

O milho é uma das principais culturas agrícolas mais produzidas e cultivadas no mundo (CANCELLIER et al., 2011), sendo que no Brasil ocupa uma área total de 15,6 milhões de hectares, com produção de 81 milhões de toneladas por ano e produtividade média em torno de 5 toneladas por hectare (CONAB, 2013).

Durante o ciclo da cultura, ocorre a associação de um complexo de pragas, como por exemplo, insetos, doenças e plantas daninhas, as quais podem comprometer a máxima expressão do potencial de produção (RODRIGUES; SILVA, 2011). Em função de inadequados métodos de controle, as plantas daninhas podem causar perdas de produtividade de 13 a 85% (CARVALHO, 2007).

O controle químico com herbicidas é o método mais utilizado para o manejo de plantas daninhas, devido à facilidade de aplicação, menor gasto de mão de obra e eficiência de controle (DAN et al., 2010; RODRIGUES et al., 2012). Além disso, com o advento da transgenia, cultivares de milho tolerantes aos herbicidas glifosato e glufosinato de amônio tem sido cada vez mais utilizadas, pois esta tecnologia permite o controle eficiente dessas plantas em pós-emergência (MONQUERO et al., 2005).

Contudo o controle químico realizado ainda nos primeiros estádios vegetativos da cultura pode provocar efeitos adversos às comunidades de insetos benéficos como por exemplo, aos parasitoides do gênero Trichogramma (STEFANELLO JÚNIOR et al., 2011). Este parasitoide é um importante agente de controle natural de ovos de lepidópteros-praga na cultura do milho, destacando-se no controle de Spodoptera frugiperda (J. E. Smith, 1797) (Lepidoptera: Noctuidae) (SOARES et al., 2012) e de Helicoverpa zea (Boddie, 1850) (Lepidoptera: Noctuidae) (FORESTI et al., 2012). Além disso, Dequech et al. (2013) relatam que dentre os ovos parasitados naturalmente por trichogrammatideos, a espécie Trichogramma pretiosum Riley, 1879 (Hymenoptera: Trichogrammatidae) é a que apresenta maior representatividade na cultura do milho.

A análise da interação do controle biológico com o químico foi desenvolvida através de testes de seletividade aos inimigos naturais pela "International Organization for Biological Control of Noxious Animals and Plants" (IOBC) - "West Palaearctic Regional Section" (WPRS) que estabeleceu diretrizes para a condução de bioensaios em diferentes fases e categorização dos agrotóxicos (HASSAN et al., 2000; HASSAN; ABDELGADER, 2001). O gênero Trichogramma foi selecionado pela IOBC como indicador para a ordem Hymenoptera, sobretudo pela sua maior suscetibilidade aos agrotóxicos (HASSAN; ABDELGADER, 2001), ampla distribuição mundial e facilidade de criação (POLANCZYK et al., 2011).

No Brasil, pesquisas sobre persistência de agrotóxicos a T. pretiosum já foram realizadas para a cultura do pessegueiro (GIOLO et al., 2008), macieira (NÖRNBERG et al., 2011) e milho (STEFANELLO JÚNIOR et al., 2012), porém esses trabalhos somente puderam avaliar o efeito de inseticidas e fungicidas sobre esse parasitoide, pois as videiras que são a planta padrão para os testes de persistência da IOBC morreriam dessecadas pela ação dos herbicidas dessecantes. Com o avanço da biotecnologia, genes de tolerância a herbicidas foram inseridos em cultivares de milho, e com isso testes de persistência com herbicidas tornaram-se passiveis de serem realizados com inimigos naturais.

Assim, em virtude da carência de informações referentes à persistência de herbicidas utilizados no manejo das plantas daninhas na cultura do milho, o objetivo deste trabalho foi avaliar o efeito da persistência de herbicidas dessecantes registrados e aplicados em milho transgênico aos adultos do parasitoide de ovos T. pretiosum.

MATERIAL E MÉTODOS

Os bioensaios foram conduzidos no Laboratório de Manejo Integrado de Pragas (LabMIP) da Faculdade de Agronomia Eliseu Maciel (FAEM) da Universidade Federal de Pelotas (UFPel), Campus Capão do Leão, RS, nos anos de 2012 e 2013 adaptando-se à metodologia padronizada pela "IOBC/WPRS" (HASSAN; ABDELGADER, 2001) para testes de persistência biológica. Em função da capacidade laboratorial, foram realizadas duas análises de persistências (I e II), cada uma consistindo de cinco bioensaios, sendo testados em cada, cinco herbicidas mais a testemunha (água destilada).

Os testes consistiram em pulverizar caldas dos diferentes herbicidas dessecantes registrados para a cultura do milho (AGROFIT, 2013) em folhas de milho transgênico, as quais foram coletadas em diferentes períodos de tempo para avaliação quanto à sua persistência sobre adultos de T. pretiosum. Alguns dos herbicidas utilizados foram selecionados de acordo com Stefanello Júnior et al. (2008) que os caracterizou como levemente nocivos (classes 2), moderadamente nocivos (classes 3) e nocivos (classes 4), sendo estes, os herbicidas Finale^®, Roundup^® Original, Roundup^® Transorb, Roundup^® WG, Trop^® e Zapp^® Qi 620 (Tabela 1). Também, Glifosato^® Atanor 48, Gli-Up^® 480 SL, Shadow^® 480 SL e Stinger^® foram testados previamente e observou-se que necessitavam de estudos mais aprofundados quando a sua persistência sobre Trichogramma.

Tabela 1
Herbicidas dessecantes avaliados nos testes de persistência biológica a adultos de Trichogramma pretiosum utilizando dosagem máxima do produto comercial registrada para a cultura do milho

Produto comercial	Ingrediente ativo	Grupo químico	DC1	C.i.a.2	C.p.c.3
Finale®	glufosinato - sal de amônio	Homoalanina substituída	1,50	0,15	0,75
Roundup®WG	glifosato - sal de amônio	Glicina substituída	3,50	1,26*	1,75
Roundup®Original	glifosato - sal de isopropilamina	Glicina substituída	6,00	1,08*	3,00
Roundup®Transorb	glifosato - sal de isopropilamina	Glicina substituída	4,50	1,08*	2,25
Glifosato®Atanor 48	glifosato - sal de isopropilamina	Glicina substituída	6,00	1,06*	3,00
Gli-Up®480 SL	glifosato - sal de isopropilamina	Glicina substituída	5,00	0,90*	2,50
Shadow®480 SL	glifosato - sal de isopropilamina	Glicina substituída	3,50	0,63*	1,75
Stinger®	glifosato - sal de isopropilamina	Glicina substituída	5,00	0,90*	2,50
Trop®	glifosato - sal de isopropilamina	Glicina substituída	6,00	1,08*	3,00
Zapp®Qi 620	glifosato - sal de potássio	Glicina substituída	4,20	1,05*	2,10

• ¹
  Dosagem de campo (Kg ou L ha^-1do produto comercial) considerando um volume de calda de 200 L ha^-1
• ²
  Concentração (%) do ingrediente ativo na calda utilizada nos bioensaios. *concentração (%) do equivalente ácido na calda utilizada nos bioensaios; ³Concentração (%) do produto comercial na calda utilizada nos bioensaios
• ^*
  concentração (%) do equivalente ácido na calda utilizada nos bioensaios
• ³
  Concentração (%) do produto comercial na calda utilizada nos bioensaios

As plantas foram cultivadas em casa-de-vegetação em vasos plásticos (0,17 m³) com oito orifícios na parte inferior, dispostos sobre pratos plásticos que serviram para irrigação. O solo utilizado foi corrigido conforme a análise de solo. Para a adubação de base foi utilizado adubo químico 05-20-20, sendo também colocado nitrogênio em cobertura na forma de ureia, na proporção de 80 kg por hectare, quando as plantas de milho apresentavam entre quatro e seis folhas; ambos os procedimentos foram realizados conforme a análise química do solo e as exigências técnicas da cultura (RODRIGUES; SILVA, 2011). As plantas foram provenientes de sementes de dois híbridos de milho da empresa Pioneer^®, o híbrido 30F53R portador da tecnologia Roundup Ready milho 2^®, tolerante aos herbicidas a base de glifosato, e o híbrido 30F53H, portador da tecnologia Liberty Link^®, tolerante a herbicidas a base de glufosinato de amônio. Foram semeadas quatro sementes por vaso e após a emergência as plantas foram mantidas em estufa sem controle das condições ambientais. Antes da instalação dos experimentos, foi realizado desbaste, permanecendo duas plantas de milho hibrido por vaso.

As plantas ao atingirem o estádio vegetativo V6, foram submetidas a pulverizações até o ponto de escorrimento, com os herbicidas diluídos em volume de calda proporcional a 200 L ha^-1. Para isso, utilizou-se pulverizador manual com capacidade de 580 mL da marca Guarany®, sendo as testemunhas pulverizadas apenas com água destilada. Posteriormente, as folhas de milho foram coletadas aos 3; 10; 17; 24 e 31 dias após a pulverização (DAP) e colocadas em gaiolas de exposição aos adultos de T. pretiosum.

A população dos parasitoides introduzida nas gaiolas foi oriunda de uma criação mantida em ovos do hospedeiro alternativo Anagasta kuehniella (Zeller, 1879) (Lepidoptera: Pyralidae) sob condições controladas (temperatura de 25 ± 2 ºC, umidade relativa de 70 ± 10% e fotofase de 14 h). Dessa forma, 300 ± 50 adultos de T. pretiosum com até 24 horas de emergência, foram inseridos nas gaiolas por meio de tubos de emergência (ampolas de vidro transparente), os quais ficaram conectados por 16 horas. Para acelerar a entrada dos parasitoides em cada gaiola, foi aumentada a intensidade luminosa na sala de testes por quatro horas. Após a desconexão, os tubos foram mantidos nas mesmas condições da criação por mais três dias, para serem utilizados no cálculo do número de insetos que entraram na gaiola.

Para a determinação do parasitismo de T. pretiosum, foram ofertados cartões com três círculos de 1 cm de diâmetro às 24 (três cartões), 48 (dois cartões) e 96 h (um cartão), contendo 450 ± 50 ovos inviabilizados de A. kuehniella, os quais permaneceram por 144 horas (seis dias) em contato com os parasitoides. No sétimo dia após o início dos bioensaios, as gaiolas foram desmontadas, sendo os cartões retirados e acondicionados em placas de Petri por mais três dias, permitindo o desenvolvimento do parasitoide até o estágio de pupa (ovos escuros), onde realizou-se a contagem do número de ovos parasitados.

O parasitismo de T. pretiosum foi avaliado de acordo com as diretrizes da IOBC a partir da contagem em lupa binocular estereoscópica dos ovos parasitados, e os herbicidas foram classificados como: inócuo (classe 1 = <30%), levemente nocivo (classe 2 = 31-80%), moderadamente nocivo (classe 3 = 81-99%) e nocivo (classe 4 = >99%). De acordo com a IOBC/WPRS, a classe da persistência de cada herbicida foi atribuída quando este causou menos de 30% de redução no parasitismo, em duas semanas consecutivas e/ou ao final do bioensaio. Assim, os herbicidas foram classificados em: vida curta (classe 1 = <5 dias de atividade tóxica), levemente persistente (classe 2 = 5-15 dias), moderadamente persistente (classe 3 = 16-30 dias) e persistente (classe 4 = >31 dias) (HASSAN; ABDELGADER, 2001).

O número de fêmeas nas gaiolas foi calculado pela seguinte fórmula (1):

(1)

sendo: Fn: é o número de fêmeas dentro da gaiola; On: número de ovos parasitados no círculo de 1 cm de diâmetro correspondente a repetição n; Ip: número médio de parasitoides emergidos por ovo; In: número de adultos remanescentes no interior do tubo de emergência correspondente a repetição n, e rs: razão sexual da população (NÖRNBERG et al., 2011). O número médio de parasitoides por ovo e a razão sexual, foram obtidos pela avaliação de quatro círculos de 1 cm de diâmetro contendo ovos de A. kuehniella parasitados.

Os dados obtidos quanto ao número médio de ovos parasitados por fêmea em cada tratamento foram testados quanto à normalidade pelo teste Shapiro-Wilk, bem como foi realizada a análise de variância, sendo analisado o valor de significância do F (p<0,05). As análises estatísticas foram realizadas com o auxílio do programa estatístico R Core Team (2012).

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Os resultados para a variável número de ovos parasitados por fêmea não apresentaram diferença significativa entre os tratamentos nas avaliações aos 3; 10; 17; 24 e 31 dias após a pulverização das plantas (DAP) tanto nos bioensaios da Persistência I como para a Persistência II (Tabela 2).

Tabela 2
Número médio de ovos parasitados por fêmea de Trichogramma pretiosum e classes de toxicidade de herbicidas dessecantes usados na cultura do milho

Produto Comercial	DC1	Dias após a pulverização das plantas
		3		10		17		24		31
		Ovos/fêmea2	C3	Ovos/fêmea	C	Ovos/fêmea	C	Ovos/fêmea	C	Ovos/fêmea	C
Persistência I
Testemunha		31,55±1,60ns		29,10±1,98ns		26,24±1,90ns		27,48±1,20ns		25,29±1,20ns
Finale®	1,50	24,54±1,32	1	28,52±1,76	1	25,75±0,96	1	29,56±2,79	1	27,02±2,53	1
Roundup®Original	6,00	25,15±4,67	1	28,54±2,58	1	24,74±1,40	1	26,40±1.09	1	24,18±2,48	1
Roundup®Transorb	4,50	26,59±1,40	1	26,34±1,13	1	24,50±2,05	1	26,72±1,09	1	23,87±1,03	1
Roundup®WG	3,50	27,29±4,20	1	28,30±1,44	1	25,45±0,99	1	26,74±1,80	1	23,24±0,90	1
Zapp®Qi 620	4,20	18,89±3,65	2	27,94±1,76	1	25,28±0,54	1	25,89±0,93	1	24,64±1,82	1
Persistência II
Testemunha		23,65±0,95ns		29,86±2,16ns		31,71±1,42ns		30,35±1,38ns		30,60±0,96ns
Glifosato®Atanor 48	6,00	27,31±0,72	1	28,67±1,33	1	31,30±2,00	1	31,83±3,07	1	30,44±0,34	1
Gli-Up®480 SL	5,00	28,03±2,94	1	27,72±3,18	1	31,39±0,68	1	29,76±1,23	1	29,56±2,23	1
Shadow®480 SL	3,50	25,37±2,85	1	25,87±4,35	1	29,63±0,89	1	29,07±1,39	1	29,19±0,57	1
Stinger®	5,00	26,70±1,15	1	27,77±0,97	1	31,84±0,44	1	28,93±0,68	1	28,47±1,93	1
Trop®	6,00	23,04±1,48	1	29,02±1,40	1	29,95±1,24	1	29.99±2,83	1	29,46±1,2	1

• ¹
  Dosagem do produto comercial (Kg ou L ha ^-1)
• ²
  Médias de ovos parasitados por fêmea
• ^ns
  são não significativo pelo teste F (p>0,05)
• ³
  C=Classes de seletividade da IOBC/WPRS em função da redução de parasitismo: 1=inócuo (<30%), 2=levemente nocivo (30-79%), 3=moderadamente nocivo (80-99%), 4= nocivo (> 99%)

Nos bioensaios das Persistências (I), observou-se que aos 3; 10; 17; 24 e 31 DAP, o número médio de ovos parasitados por fêmea de T. pretiosum nas testemunhas foram de no mínimo 25,29 e para a Persistência (II) de 23,65 (Tabela 2). Segundo a IOBC/WPRS estes resultados são adequados por se encontrarem acima do valor mínimo (15 ovos parasitados por fêmea), sendo esta variável considerada como critério de validação dos bioensaios para a espécie Trichogramma cacoeciae Marchal, 1927 (Hymenoptera: Trichogrammatidae), haja vista que os resultados dos demais tratamentos são obtidos em relação a esse tratamento (HASSAN et al., 2000; HASSAN; ABDELGADER, 2001). Embora esse valor mínimo ainda não tenha sido normatizado para a espécie T. pretiosum, vem sendo utilizado da mesma forma como critério laboratorial para validação dos experimentos de seletividade com agrotóxicos (GIOLO et al., 2005).

Em geral, nos bioensaios (Persistências I e II), foi verificada a inocuidade (classe 1) de todos os herbicidas em todas as épocas de avaliação ao parasitoide T. pretiosum, sendo o parasitismo dos tratamentos similar aos das testemunhas. O único herbicida que apresentou classe de seletividade diferente foi o dessecante Zapp^® Qi 620 (Tabela 2), sendo classificado como levemente nocivo (classe 2) por apresentar redução no parasitismo de 40,12% na avaliação aos 3 DAP (Tabela 3).

Tabela 3
Redução do parasitismo de Trichogramma pretiosum e classes de persistência, segundo metodologia da IOBC/WPRS, para herbicidas dessecantes registrados para a cultura do milho em casa-de-vegetação

Produto comercial	DC1	Dias após pulverização das plantas					Persistência
		3	10	17	24	31
		RP(%)2	RP(%)	RP(%)	RP(%)	RP(%)	Dias	Classe3
Persistência I
Testemunha	-	-	-	-	-	-	-	-
Finale®	1,50	22,21	1,99	1,86	0,00	0,00	<5	1
Roundup®Original	6,00	20,28	1,92	5,71	3,93	4,38	<5	1
Roundup®Transorb	4,50	15,72	9,48	6,63	2,76	5,61	<5	1
Roundup®WG	3,50	13,50	2,74	3,01	2,69	8,10	<5	1
Zapp®Qi	4,20	40,12	3,98	3,65	5,78	2,57	<5	1
Persistência II
Testemunha	-	-	-	-	-	-	-	-
Glifosato®Atanor 48	6,00	0,00	3,98	1,29	0,00	0,52	<5	1
Gli-Up®480 SL	5,00	0,00	7,16	1,00	1,94	3,39	<5	1
Shadow®480 SL	3,50	0,00	0,00	6,55	4,21	4,60	<5	1
Stinger®	5,00	0,00	7,00	0,00	4,67	6,96	<5	1
Trop®	6,00	2,57	2,81	5,55	1,18	3,72	<5	1

• ¹
  Dosagem do produto comercial (Kg ou L ha^-1)
• ²
  RP = Redução do parasitismo comparado com a testemunha negativa (água destilada) utilizada no bioensaio
• ³
  Classes da IOBC/WPRS, para testes de persistência em função da duração da atividade tóxica menor que 30% na redução do parasitismo em dias: 1 = vida curta (< 5 dias); 2 = levemente persistente (5-15 dias); 3 = moderadamente persistente (16-30 dias); 4 = persistente (> 30 dias)

Considerando o ingrediente ativo presente nas formulações comerciais à base de glifosato, verifica-se que o produto que apresenta sal de potássio em sua constituição (Tabela 1), apresentou toxicidade superior aos demais aos três DAP (Tabela 2). Segundo Giolo et al. (2005) dentre as formulações à base de glifosato, podem ser verificadas toxicidades diferenciadas para os sais de isopropilamina, de amônio ou potássio quando testados para as fases adultas de T. pretiosum em laboratório (sobre placas de vidro), sendo o sal de isopropilamina mais tóxico que o sal de potássio. No presente trabalho a interação com as plantas de milho levaram a inocuidade (Classe 1) dos herbicidas com sal isopropilamina (Tabela 2), já o sal de potássio manteve a classe 2 de seletividade, mas a interação com a planta fez com que a redução no parasitismo fosse em torno de 20% menor que no estudo de Giolo et al. (2005), demonstrando que a interação com a planta acelera o processo de degradação do herbicida, consequentemente o mesmo se torna menos tóxico aos adultos de T. pretiosum. Segundo Hetherington et al. (1999) a absorção de glifosato pelas plantas de milho tolerantes é elevada já um dia após o tratamento das mesmas, fato esse que certamente influencia na toxicidade a T. pretiosum. Isso reforça a importância de testes mais aprofundados como o de persistência para se ter o real efeito de um herbicida sobre o parasitoide em condições de campo.

Quanto à variável persistência, os herbicidas dessecantes Finale^®, Glifosato^® Atanor 48, Gli-Up^® 480 SL, Roundup^® Original, Roundup^® Transorb, Roundup^® WG, Shadow^® 480 SL, Stinger^®, Trop^® e Zapp^® Qi 620 foram classificados como de vida curta, pois apresentaram efeitos tóxicos inferiores a 5 dias (Tabela 3), sendo este efeito caracterizado pela redução inferior a 30% no parasitismo desde a primeira semana da pesquisa ou por duas semanas consecutivas na avaliação de 10 DAP. Nesse sentido, Bernard et al. (2010) observaram o efeito de agrotóxicos utilizados na cultura da videira, e verificaram que o herbicida Roundup não apresentou efeito sobre a mortalidade e fecundidade do ácaro predador Euseius victoriensis (Womersley, 1954) (Acari: Phytoseiidae) aos 2; 4 e 7 após a aplicação do mesmo em folhas de soja. Esses dados corroboram com os resultados do presente estudo onde a maioria dos produtos formulados com glifosato não apresentou efeito no parasitismo de T. pretiosum já aos 3 dias após a pulverização.

Resultados de testes de seletividade em condições de laboratório ao parasitoide Trichogramma, demonstraram que vários dos produtos utilizados no presente trabalho possuem atividade tóxica ao inimigo natural, para a cultura do pêssego (GIOLO et al., 2005), maça (MANZONI et al., 2006, 2007) e milho (SEBAI; EL-TAWIL, 2012; STEFANELLO JÚNIOR et al., 2008). Stefanello Júnior et al. (2008) estudaram a seletividade de 24 herbicidas recomendados para a cultura do milho, e classificaram os herbicidas Trop^® e Zapp^® Qi 620, como levemente nocivos (classe 2); já Finale^®, Roundup^® Original, Roundup^® Transorb e Roundup^® WG foram classificados como moderadamente nocivos (classe 3) aos adultos de T. pretiosum.

No entanto, deve-se salientar que os bioensaios de seletividade em laboratório sujeitam os parasitoides a máxima exposição aos resíduos dos herbicidas nas gaiolas de exposição. Segundo Hassan et al. (2000) os estudos de seletividade, devem ser conduzidos com as formulações comerciais dos agrotóxicos pois alguns adjuvantes, em especial surfactantes nos herbicidas, reduzem a tensão superficial e facilitam dessa forma a penetração do herbicida no organismo do inseto, gerando alteração na classe de seletividade. Ainda, é importante ressaltar que alguns herbicidas apresentam formulação oleosa e quando aplicadas em placas de vidro, os adultos de T. pretiosum ficam aderidos ao óleo e morrem pela ação física do herbicida e não pelo efeito tóxico em si (GIOLO et al., 2006).

Agrotóxicos que se revelam tóxicos para T. pretiosum em bioensaios de seletividade em laboratório, podem apresentar efeitos reduzidos quando testados em condições de casa de vegetação (persistência) e campo (NÖRNBERG et al., 2011). Nessas circunstâncias o inimigo natural, pode evitar os locais contaminados com os agrotóxicos, além da degradação dos produtos químicos ser acelerada devido a fotodegradação (ROCHA; CARVALHO, 2004).

Nas Persistências I e II (Tabela 2) foi possível observar que os produtos testados apresentaram pouca ou nenhuma toxicidade nos testes de persistência logo nos primeiros dias após a pulverização das plantas.

A persistência de um agrotóxico que se deposita sobre as folhas das plantas está relacionada aos processos degradativos bióticos e abióticos juntamente com a volatilização da molécula. Essa apresenta uma forte dependência, normalmente de forma não-linear, com a temperatura (GAVRILESCU, 2005). O presente estudo foi conduzido com plantas cultivadas em casa de vegetação, sem controle de condições ambientais, e nos meses de novembro a dezembro, que se caracterizou por temperaturas elevadas no RS, sendo que por vezes a temperatura superava 35 ºC dentro da casa-de-vegetação, o que provavelmente contribuiu para uma aceleração nos processos de degradação dos agrotóxicos.

Testes de persistência biológica auxiliam a estimar a duração da atividade tóxica de um agrotóxico, pois o seu impacto no campo é bastante afetado pela sua persistência (NÖRNBERG et al., 2011). Segundo a metodologia da IOBC/WPRS, os agrotóxicos Finale^®, Glifosato^® Atanor 48, Gli-Up^® 480 SL, Roundup^® Original, Roundup^® Transorb, Roundup^® WG, Shadow^® 480 SL, Stinger^®, Trop^® e Zapp^® Qi 620 foram classificados como de vida curta (classe 1) nos bioensaios de persistência e por serem seletivos aos adultos de T. pretiosum, não necessitam passar para a próxima etapa de testes, a campo, em lavouras comerciais de milho.

CONCLUSÃO

Os herbicidas dessecantes Finale^®, Glifosato^® Atanor 48, Gli-Up^® 480 SL, Roundup^® Original, Roundup^® Transorb, Roundup^® WG, Shadow^® 480 SL, Stinger^®,Trop^® e Zapp^® Qi 620 são considerados de vida curta (classe 1) aos adultos de T. pretiosum com menos de 5 dias de ação nociva. Em função dos resultados obtidos, verifica-se que liberações inundativas de T. pretiosum para o controle de lepidópteros praga na cultura do milho, podem ser realizadas de forma segura logo aos 3 DAP dos herbicidas dessecantes, com o mínimo impacto sobre o parasitoide, para a maioria dos produtos testados.

• 1
  Parte da Dissertação de Mestrado do primeiro autor apresentada ao Programa de Pós-Graduação em Fitossanidade da Faculdade de Agronomia Eliseu Maciel, Universidade Federal de Pelotas

AGRADECIMENTOS

À Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES), pela concessão da bolsa de mestrado ao primeiro autor. Ao Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq) e à Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado do Rio Grande do Sul (FAPERGS), pela concessão de bolsas de iniciação científica e financiamento da pesquisa.

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  Jan-Mar 2017

Histórico

• Recebido
  29 Nov 2013
• Aceito
  13 Maio 2016