Água aquecida e radiação UV-C no controle pós-colheita de Cryptosporiopsis perennans em maçãs

Heated water and UV-C radiation to postharvest control of Cryptosporiopsis perennans on apples

FITOPATOLOGIA

Água aquecida e radiação UV-C no controle pós-colheita de Cryptosporiopsis perennans em maçãs

Heated water and UV-C radiation to postharvest control of Cryptosporiopsis perennans on apples

Vinícius Adão Bartnicki^I; Rosa Maria Valdebenito-Sanhueza^II; Cassandro Vidal Talamini do Amarante^I; Luis Antônio Suita de Castro^III; Mara Regina Rizzatti^IV; João Antônio Vargas de Souza^IV

^IUniversidade do Estado de Santa Catarina, Centro de Ciências Agroveterinárias, Departamento de Agronomia, Avenida Luiz de Camões, nº2.090, Bairro Conta Dinheiro, CEP 88520-000 Lages, SC. E-mail: [e-mail], [e-mail]

^IIProterra Engenharia Agronômica, BR 116, nº7.320, Bairro Fátima, CEP 95200-000 Vacaria, RS. E-mail: [e-mail]

^IIIEmbrapa Clima Temperado, Rodovia BR 392, Km 78, Caixa Postal 403, CEP 96001-970 Pelotas, RS. E-mail: [e-mail]

^IVPontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, Centro em Pesquisa e Desenvolvimento em Física, Grupo de Física das Radiações, Avenida Ipiranga, nº6.681-96A, CEP 90619-900 Porto Alegre, RS. E-mail: [e-mail]

RESUMO

O objetivo deste trabalho foi avaliar a colonização de Cryptosporiopsis perennans na epiderme de maçãs e a eficiência da aplicação de água aquecida e radiação UV-C no controle desse patógeno. Em maçãs submetidas à inoculação de C. perennans, a colonização de lenticelas e das áreas adjacentes pelo patógeno foi avaliada por microscopia eletrônica de varredura. A sensibilidade dos conídios de C. perennans aos tratamentos foi avaliada em suspensão aquosa, às temperaturas de 28, 45, 50 e 55ºC, por 15 e 30 s, e às doses de radiação UV-C de 0,018, 0,037, 0,075, 0,150, 0,375, 0,750, 1,500 e 3,000 kJ m^-2. Em maçãs submetidas à inoculação de C. perennans, foram avaliados os efeitos de 0,375, 0,750 e 1,500 kJ m^-2 de radiação UV-C e da aspersão de água aquecida à 50ºC, por 15 e 30 s no controle do patógeno. O fungo produziu abundante micélio e conídios nas lenticelas e nas áreas adjacentes, na epiderme das maçãs. A água aquecida a 50ºC por 15 s e à dose de radiação de UV-C de 0,750 kJ m^-2 reduzem em mais de 99% a sobrevivência de conídios. A aspersão de água aquecida a 50ºC por 15 s e à dose de radiação de UV-C de 0,375 kJ m^-2, controlam C. perennans em maçãs.

Termos para indexação:Malus domestica, desinfestação, podridão-olho-de-boi, pós-colheita, radiação UV-C, tratamento térmico.

ABSTRACT

The objective of this work was to assess the colonization of Cryptosporiopsis perennans in the epidermis of apples and the efficiency of heated water and UV-C radiation application to control this pathogen. In apples inoculated with C. perennans, the colonization of lenticels and adjacent areas by the pathogen was observed by electronic scanning microscopy. The sensitivity of C. perennans conidia was evaluated in aqueous suspension, at temperatures of 28, 45, 50 and 55ºC for 15 and 30 s, and at UV-C radiation doses of 0.018, 0.037, 0.075, 0.150, 0.375, 0.750, 1.500 and 3.000 kJ m^-2. The effects of UV-C radiation doses at 0.375, 0.750 and 1.500 kJ m^-2 and heated water at 50ºC, sprayed during 15 and 30 s were evaluated for controlling C. perennans in apples inoculated with the pathogen. The fungus produced abundant mycelium and conidia in lenticels and adjacent areas on the epidermis of the apples. The heated water at 50ºC during 15 s and a 0.750 kJ m^-2 UV-C radiation dose reduced conidia survival in more than 99%. Heated water sprayed at 50ºC during 15 s and a UV-C radiation dose of 0.375 kJ m^-2 control C. perennans in apples.

Index terms:Malus domestica, desinfestation, bull's eye rot, postharvest, UV-C radiation, heat treatment.

Introdução

As doenças pós-colheita que causam as maiores perdas de maçãs no Brasil são o mofo-azul (Penicillium expansum Link ex Fries) e a podridão- olho-de-boi [Cryptosporiopsis perennans (Zeller & Childs) Wollenweber (1939)] (Valdebenito-Sanhueza, 2002). Os métodos de controle dessas doenças incluem medidas que assegurem a menor suscetibilidade dos frutos à infecção e uma menor pressão de inóculo.

Nos tratamentos para controle de conídios associados à água da lavagem das maçãs, são recomendados produtos com diferentes formulações de cloro orgânico e inorgânico. No entanto, os tratamentos com cloro livre, apesar de serem altamente eficazes, causam corrosão do maquinário processador e poluição do meio ambiente. Processos alternativos para esse fim, que não utilizam cloro livre, podem ser empregados, tais como o tratamento térmico e a radiação ultravioleta (UV-C) (Gordon et al., 1993).

Conídios de patógenos têm mostrado inibição da germinação quando submetidos a temperaturas altas na faixa de 40 a 70ºC. Estudos in vitro têm mostrado que conídios de muitos fungos são inativados quando expostos à temperatura de 60ºC por 5 a 10 min (Civello et al., 1997). O método hidrotérmico atinge conídios e infecções quiescentes, presentes na superfície ou nas primeiras camadas celulares do fruto. Muitos frutos toleram temperaturas de 50 a 60ºC por até 10 min, e exposições por tempos menores a essas temperaturas podem controlar patógenos de pós-colheita sem causar danos ao fruto (Lurie et al., 1998). No Brasil, em estudos com maçãs 'Fuji', a aspersão de água aquecida a 53ºC durante 30 s controlou Botryosphaeria dothidea (Oster, 2004).

O modo de ação da radiação UV-C pode ser pela redução dos propágulos na superfície dos frutos, por meio do efeito germicida, ou pela indução de resistência no hospedeiro (Stevens et al., 2005). Aradiação ultravioleta com comprimento de onda próximo de 254 nm (UV-C) destrói as estruturas do patógeno, inibe a germinação ou retarda o desenvolvimento do fungo por meio de desnaturação proteica e desorganização da membrana plasmática (Wolfe, 1990). Moy (1983) verificou que a radiação UV-C na dose de 1,10 kJ m^-2 é suficiente para reduzir a viabilidade de conídios de Rhizopus stolonifer in vitro. Camili et al. (2004) mostraram que a radiação m^-2 UV-C na dose de 0,84 kJ apresentou efeito germicida sobre conídios de Botrytis cinerea, e doses entre 0,2 e 0,6 kJ m^-2 retardaram e diminuíram sua germinação. In vivo, a dose de 5,4 kJ m^-2 foi eficiente contra a população epífita de P. expansum em maçãs 'Fuji' (Valdebenito-Sanhueza & Maia, 2001).

Não existem informações documentadas acerca da colonização de C. perennans em maçãs. O conhecimento das relações patógeno-hospedeiro é necessário para definir estratégias de controle do patógeno, e pode ser obtido pela técnica de microscopia eletrônica de varredura. Adicionalmente, relatos sobre a sensibilidade in vitro e in vivo de conídios C. perennans à água aquecida e à radiação UV-C não foram encontrados na literatura.

O objetivo deste trabalho foi avaliar a colonização de C. perennans na epiderme de maçãs e a eficiência da aplicação de água aquecida e radiação UV-C no controle desse patógeno.

Material e Métodos

Os experimentos foram realizados em 2008, na Embrapa Uva e Vinho, Estação Experimental de Fruticultura Temperada (Vacaria, RS), e na Embrapa Clima Temperado (Pelotas, RS). Em todos os ensaios, foi utilizado o isolado Cp5 de C. perennans, obtido a partir de maçãs 'Fuji' com sintomas típicos de podridão-olho-de-boi, provenientes de um pomar da região de Vacaria, RS, pertencente à coleção da Embrapa Uva e Vinho. O cultivo e a manutenção do isolado foram feitos em BDA.

As suspensões de conídios foram preparadas a partir de colônias com 15 dias da repicagem, desenvolvidas em placas contendo BDA e incubadas a 22ºC sob exposição à luz fluorescente contínua (luz do dia). As colônias foram cobertas com 10 mL de água destilada esterilizada contendo Tween 80 (0,001%). A concentração de conídios desejada foi ajustada com auxílio do hemacitômetro.

Para a análise da colonização da epiderme do fruto por C. perennans, foram utilizadas maçãs 'Maxi Gala' (calibre 198) e 'Fuji Kiku' (calibre 198), cultivares precoce e tardia, respectivamente. A primeira tinha quatro meses e a segunda sete meses de armazenamento em atmosfera controlada (AC). Os frutos, sem ferimentos prévios, foram selecionados e submetidos à inoculação artificial de discos de micélio de C. perennans ou discos de papel filtro de 5 mm de diâmetro embebidos na suspensão de conídios do patógeno (1 x 10⁶ conídios mL^-1). As inoculações foram feitas em dois locais opostos da região equatorial das maçãs. Após a deposição dos discos, as áreas submetidas à inoculação foram cobertas com algodão umedecido fixado com fita adesiva, segundo o método descrito por Guerra (2007).

Para 'Maxi Gala', a incubação foi realizada em luz fluorescente contínua (luz do dia) a 22ºC, durante 48 horas e sete dias. As maçãs 'Fuji Kiku' foram submetidas à inoculação de discos de micélio do patógeno e foram incubadas por 13 dias a 22ºC, sob luz fluorescente contínua (luz do dia). Em três frutos homogêneos de cada método de inoculação, foram coletadas amostras de tecido contendo lenticelas e áreas adjacentes (2x2 mm da região inoculada).

Para a análise da colonização da epiderme por meio de microscopia eletrônica de varredura, as amostras foram preparadas segundo o método descrito por Castro (2002). A formulação do fixador (Karmovisk) foi ajustada às condições ideais de concentração, pH e molaridade. O fixador foi aplicado à temperatura ambiente, por imersão, com tempo de ação de duas horas. A pós-fixação foi feita com tetróxido de ósmio (OsO₄) tamponado a 1%, durante uma hora, para garantir a estabilização da forma. Após a fixação, o material foi desidratado em banhos duplos de etanol a 30, 50, 70, 80, 95 e 100%. Posteriormente, o álcool foi substituído por gás carbônico liquefeito, no aparelho de ponto crítico. Todas as amostras foram colocadas no suporte porta-amostras do microscópio ("stub"), de acordo com a melhor orientação em relação ao feixe de varredura e ao coletor de elétrons secundários. As amostras foram identificadas e metalizadas com ouro, depositado pelo processo de "sputtering" para que os átomos atingissem toda a superfície do material. Para a obtenção de informações da topografia da superfície, foram utilizados elétrons secundários (baixa energia) para captação das imagens, provenientes da interação do feixe primário com a camada de ouro que recobre o espécime. O material foi avaliado em um microscópio de varredura modelo DSM 940A (Carl Zeiss, Oberkochen, Alemanha). Foram usadas tensões aceleradoras de 10 kV. As amostras foram visualizadas com ampliações de 200 e 1.000 vezes para 'Fuji Kiku' e 'Maxi Gala', respectivamente.

Para avaliação in vitro da sensibilidade de conídios de C. perennans à água aquecida, 0,1 mL da suspensão mL^-1 de 1x10⁴ conídios foi transferido a tubos contendo 3 mL de água às temperaturas desejadas, em banho-maria. Os tratamentos utilizados foram: 28ºC por 15 s (testemunha); 45ºC por 15 s; 45ºC por 30 s; 50ºC por 15 s; 50ºC por 30 s; 55ºC por 15 s; e 55ºC por 30 s. A faixa de temperatura, o tempo de exposição e os métodos usados foram definidos segundo Oster (2004), que utilizou o tratamento térmico no controle de B. dothidea. Após cada tratamento, os tubos foram colocados em água a 1-2ºC para deter a exposição dos conídios às temperaturas avaliadas. Alíquotas de 0,1 mL de cada tubo foram transferidas para placas com BDA acidificado (pH 4,5 ajustado com ácido lático a 85%), as quais foram incubadas a 22ºC por sete dias, sob luz fluorescente contínua (luz do dia).

Para avaliação da sensibilidade de conídios de C. perennans à radiação UV-C, foram conduzidos dois experimentos. Uma suspensão de 3 mL, com 5x10² conídios mL^-1 do patógeno em placas de Petri esterilizadas (6 cm de diâmetro), foi submetida às doses de radiação UV-C 0,018, 0,037, 0,075 e 0,150 kJ m^-2, no primeiro experimento, e 0,375, 0,750, 1,500 e 3,000 kJ m^-2, no segundo. Em ambos os experimentos, o tratamento testemunha não recebeu radiação UV-C. As doses de radiação UV-C foram definidas de acordo com os trabalhos de Moy (1983) e Marquenie et al. (2002). Após cada tratamento, alíquotas de 0,1 mL de cada placa foram transferidas para placas com BDA acidificado (pH 4,5 ajustado com ácido lático a 85%) e incubadas a 22ºC por sete dias, sob luz fluorescente contínua (luz do dia).

Para avaliação dos tratamentos com água aquecida e com radiação UV-C, foi determinada a sobrevivência de conídios nas placas, estimada pelo número de unidades formadoras de colônias (UFC). Foi utilizado o delineamento inteiramente casualizado, com seis repetições para o tratamento de água aquecida e três repetições para radiação UV-C. A unidade experimental foi representada pela placa. Os dados de número de UFC foram transformados para (x + 1)^0,5 e submetidos à análise de variância (ANOVA) utilizando o programa Sanest (Zonta & Machado,1987). As médias dos tratamentos foram comparadas pelo teste de Duncan, a 5% de probabilidade.

Para avaliar a eficiência dos tratamentos com água aquecida e com radiação UV-C na desinfestação de frutos, foram utilizadas maçãs 'Fuji Kiku', armazenadas por oito meses em AC. Os frutos foram selecionados e desinfestados com solução aquosa preparada com hipoclorito de sódio a 2%, água destilada e álcool (92,8ºGL), na proporção de 4,5:4,5:1, durante 3 min. Os frutos foram enxaguados em água destilada e, em seguida, secos com papel toalha. Uma suspensão com 1x10⁶ conídios mL^-1 de C. perennans foi aspergida nas maçãs e, após quatro horas a 20ºC, os frutos foram submetidos aos tratamentos com água aquecida e com radiação UV-C mais eficientes dos experimentos in vitro - aspersão de água aquecida a 20ºC por 30 s (testemunha), a 50ºC por 15 s e a 50ºC por 30 s; sem radiação UV-C (testemunha), e doses de radiação UV-C de 0,375, 0,750 e 1,500 kJ m^-2. Os tratamentos foram implementados na linha de seleção de maçãs, equipada com rolos recobertos com escova de náilon com diâmetro total de 38 cm e rotação constante de 108 rpm.

Nos experimentos com radiação UV-C, as irradiâncias espectrais das fontes monocromáticas foram obtidas antes da exposição das amostras, segundo as normas técnicas NBR IEC 60335-2-27 e NBR ISO/IEC 17025 (associação brasileira de normas técnicas, 2000, 2005). A radiação foi aferida com radiômetro manual UVX calibrado com o espectrorradiômetro IL2000, conforme sugerido por Souza (2005), e a dose foi calculada pelo período de exposição à radiação utilizada.

Em ambos os experimentos, após os tratamentos, as maçãs de cada unidade experimental foram imersas consecutivamente em 300 mL de água destilada e esterilizada, contendo Tween 80 (0,001%), e submetidas à lavagem por sonicação durante 30 s. Em seguida, amostras de 0,1 mL de água foram retiradas de cada solução e cultivadas em BDA acidificado (pH 4,5 ajustado com ácido lático a 85%), por sete dias a 22ºC, sob luz fluorescente contínua (luz do dia). A contagem de colônias desenvolvidas (UFC) foi utilizada para estimar a sobrevivência dos conídios, e os valores foram expressos em percentagem de controle em relação à testemunha.

Utilizou-se o delineamento inteiramente casualizado, e a unidade experimental foi composta por quatro repetições de dois frutos. Os dados foram transformados para (x + 1)^0,5 e submetidos à análise de variância (ANOVA) utilizando o programa Sanest (Zonta & Machado, 1987), e as médias foram comparadas pelo teste de Duncan, a 5% de probabilidade.

Resultados e Discussão

Pelas análises de microscopia eletrônica de varredura, observou-se a colonização das lenticelas em maçãs 'Maxi Gala' submetidas à inoculação de C. perennans, com crescimento profuso de micélio e esporulação do patógeno (Figura 1). Em maçãs 'Fuji Kiku', além da colonização das lenticelas, observou-se a formação de micélio na epiderme.

Em maçãs 'Cox's Orange Pippin', foi observado que a penetração deste patógeno pode ocorrer pelas aberturas naturais, como a calicinal e a peduncular, e também pelas lenticelas, visto que ele desenvolve a podridão quando inoculado nesses pontos (Edney, 1956). Todavia, não foi localizado nenhum trabalho relatando a colonização da epiderme sem ferimento, como foi observado em maçãs 'Fuji Kiku' no presente trabalho. Essa informação é importante, pois a epiderme, que seria a principal barreira contra patógenos, pode representar importante via de infecção de C. perennans, mesmo quando não há ferimentos. O estádio de maturação avançada, de quatro e sete meses emAC, dos frutos 'Maxi Gala' e 'Fuji Kiku', respectivamente, e a temperatura de incubação de 22ºC, utilizados no presente trabalho, provavelmente facilitaram a infecção e a colonização de C. perennans, que são favorecidos pelo aumento do tempo de armazenamento dos frutos e temperaturas próximas de 20ºC (Edney, 1956). Os conídios de C. perennans podem estar presentes nas lenticelas após a colheita, mesmo em frutos provenientes de pomaresprotegidos quimicamente durante o ciclo vegetativo, já que essas estruturas restringem o acesso de fungicidas (Edney, 1970). Conforme Dugan et al. (1993), os conídios desse patógeno tendem a aderir às lenticelas e às rachaduras da cutícula, mas os autores não relatam a possibilidade dos conídios serem gerados nas lenticelas, como observado no presente trabalho. Essa constatação justifica o uso de controle cultural e químico no campo, preferencialmente em ASSOCIAÇÃO com métodos físicos, químicos e biológicos de controle pós-colheita, visando diminuir a população de C. perennans presente na superfície dos frutos.

Na avaliação da sensibilidade de C. perennans à água aquecida, todos os tratamentos diminuíram a sobrevivência dos conídios quando comparados à testemunha (Tabela 1). Para a temperatura de 45ºC, a elevação no tempo de exposição de 15 para 30 s reduziu a sobrevivência dos conídios. Para as temperaturas de 50 e 55ºC, independentemente do tempo de exposição, a sobrevivência foi ainda mais reduzida, com o controle superior a 99%. Resultados semelhantes foram obtidos por Marquenie et al. (2002), que observaram maior inativação dos conídios de B. cinerea e Monilinia fructigena com o aumento na temperatura e a duração do tratamento. Conforme Oster (2004), a sobrevivência de conídios de B. dothidea foi inibida na temperatura de 58ºC durante 60 s. A maior sensibilidade de conídios de C. perennans ao calor, em comparação a B. dothidea, pode estar relacionada às diferenças nas características genéticas entre esses dois patógenos ou ao maior tamanho dos conídios de B. dothidea (5-8x15-29 µm) em relação aos de C. perennans (1-2x5-8 µm) (Bogo et al., 2008). Fato semelhante foi observado por Marquenie et al. (2002), que concluíram que os conídios de M. fructigena foram mais sensíveis ao calor do que os de B. cinerea.

A eficácia do tratamento térmico na redução da viabilidade do patógeno pode ainda ser medida pela redução no crescimento micelial (Ferguson et al., 2000). Diferenças de sensibilidade do micélio dos patógenos ao tratamento hidrotérmico foram relatadas por Karabulut et al. (2002). Segundo esses autores, o crescimento micelial de M. fructicola foi inibido pela exposição a 50ºC durante 10 s, enquanto o crescimento de P. expansum só foi inibido a 60ºC durante 20 s. Barkai-Golan & Phillips (1991) observaram ainda que a resposta do patógeno ao calor pode ser influenciada pelo conteúdo de umidade dos esporos, pela atividade metabólica do patógeno, pela idade do inóculo e pela composição química da água do tratamento.

A radiação UV-C reduziu a sobrevivência dos conídios de C. perennans in vitro, em todas as doses avaliadas (Tabela 1). No primeiro experimento, as doses de 0,037 a 0,150 kJ m^-2 diminuíram em mais de 70% a sobrevivência dos conídios do patógeno em relação à testemunha. No segundo experimento, as doses de 0,750, 1,500 e 3,000 kJ m^-2 reduziram em mais de 99% a sobrevivência dos conídios em relação à testemunha. Neste experimento, a exposição à dose de 0,375 kJ m^-2 foi menos eficiente em relação às doses maiores, mas ainda assim apresentou controle de 86,4%.

Marquenie et al. (2002) observaram aumento na eficiência da radiação UV-C no controle de conídios de B. cinerea e M. fructigena com o incremento na dose utilizada de 0,1 a 15 kJ m^-2. Moy (1983) verificou que a radiação UV-C na dose de 1,1 kJ m^-2 é suficiente para reduzir a viabilidade de R. stolonifer in vitro. Segundo Camili et al. (2004), a dose de 0,84 kJ m^-2 apresenta efeito germicida sobre conídios de B. cinerea, e as doses de 0,2 a 0,6 kJ m^-2 retardam e diminuem a germinação dessas estruturas. Portanto, as doses de radiação UV-C eficientes para controle dos esporos de R. stolonifer, B. cinerea e C. perennans são similares, o que demonstra o potencial de sua implementação comercial para o controle em pós-colheita dos diferentes patógenos que ocorrem em maçãs.

A sobrevivência de conídios de C. perennans na epiderme das maçãs submetidas à inoculação do patógeno e à aspersão de água aquecida a 50ºC por 15 e 30 s foi reduzida em 97,7 e 99,2%, respectivamente, em relação à testemunha (Tabela 2). Esse resultado corrobora os resultados de outros autores, que utilizaram tratamentos com aspersão de água com temperaturas altas e menores períodos de exposição para o controle de podridões (Fallik et al., 2001; Karabulut et al., 2002). Maçãs 'Golden Delicious' com infecção natural ou submetidas à inoculação de P. expansum e tratadas com aspersão de água a 55ºC por 15 s apresentaram menor incidência da doença, sem que isso tenha comprometido a qualidade físico-química dos frutos (Fallik et al., 2001). Resultados semelhantes foram obtidos por Oster (2004), que não detectou alteração na qualidade de maçãs 'Fuji' submetidas à aspersão de água a 58ºC durante 60 s, para controle de B. dothidea.

A imersão de frutos em água aquecida tem mostrado eficiência no controle de doenças em maçãs (Maxin et al., 2005). Todavia, o alto custo para o aquecimento de grandes volumes de água torna o tratamento por imersão inviável em escala comercial (Rodov et al., 1995). Além disso, a exposição dos frutos a tratamentos de imersão em água aquecida por mais de 20 s, citados como eficientes, interfere no rendimento de processamento de empacotadoras de maçãs do Sul do Brasil. A aspersão de água aquecida associada à escovação dos frutos por períodos curtos (até 20 s) apresenta maiores vantagens no controle de doenças em relação ao tratamento térmico por imersão (Fallik et al., 2001; Karabulut et al., 2002). A aspersão dos frutos com água aquecida associada à escovação pode remover conídios e diminuir a sua viabilidade (Couey, 1989). A aspersão por períodos curtos permite o uso de temperaturas maiores, que são letais para a maioria dos patógenos, sem aumentar substancialmente a temperatura interna dos frutos e, portanto, sem acelerar o seu amadurecimento ou causar algum dano à epiderme.

As doses de radiação UV-C 0,375, 0,750 e 1,500 kJ m^-2 foram igualmente eficientes no controle dos conídios de C. perennans presentes na epiderme das maçãs (controle de 94 a 98%) (Tabela 2). Em condições de manejo comercial de maçãs 'Fuji', o tratamento com radiação UV-C na dose de 5,9 kJ m^-2 proporcionou entre 90 e 100% de controle da contaminação superficial de P. expansum (Valdebenito-Sanhueza & Maia, 2001). No presente trabalho, foram utilizadas doses inferiores a essas, as quais foram eficientes no controle dos conídios de C. perennans em maçãs 'Fuji Kiku'. O uso de doses de radiação UV-C menores para controle dos patógenos causadores de podridões de maçãs é importante, uma vez que o processo de classificação e embalagem é rápido e, portanto, requer tratamentos eficientes com períodos curtos de exposição. Outra vantagem do uso de radiação UV-C, não avaliada no presente trabalho, é a indução de resistência dos tecidos vegetais aos patógenos, conforme observado em batata, cebola, tangerina e maçã (Brown et al., 2001; Stevens et al., 2004, 2005; Yaun, 2004). Stevens et al. (2005) usaram a dose de radiação UV-C de 7,5 kJ m^-2 para a indução de resistência e redução de podridões em maçãs 'Golden Delicious', inoculadas com Colletotrichum gloeosporioides.

No presente trabalho, observou-se que as doses de radiação UV-C eficientes nos experimentos in vitro e in vivo foram semelhantes. Porém, Mercier et al. (2001) relataram que, apesar de ser altamente germicida a conídios de B. cinerea, a radiação UV-C (0,22 a 2,20 kJ m^-2) não controla a infecção em pimentões inoculados 24 horas antes do tratamento. Nesse caso, os conídios provavelmente germinaram e infectaram os frutos durante 24 horas e, portanto, não foram atingidos pela radiação UV-C.

O emprego de tratamentos físicos para o controle de propágulos de patógenos presentes na superfície das maçãs é de grande importância, já que eles são os principais responsáveis pelo desenvolvimento de podridões durante a armazenagem, transporte e comercialização, especialmente em frutos destinados à exportação. O desenvolvimento de equipamentos para instalação nas empacotadoras será necessário para viabilizar o uso comercial dessas técnicas.

Conclusões

1. O fungo Cryptosporiopsis perennans, ao colonizar a epiderme das maçãs, produz abundante micélio e conídios nas lenticelas e nas áreas adjacentes.

2. A aplicação de água aquecida a 50ºC durante 15 s e dose de radiação UV-C de 0,75 kJ m^-2 reduzem em mais de 99% a sobrevivência de conídios de C. perennans in vitro.

3. A desinfestação de C. perennans em maçãs 'Fuji Kiku' é obtida com aspersão de água aquecida a 50ºC por 15 s e radiação UV-C na dose de 0,375 kJ m^-2.

Agradecimentos

Ao Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico, à Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior e ao Projeto Inova Maçã, pelo apoio financeiro.

Recebido em 28 de abril de 2009 e aprovado em 15 de janeiro de 2010

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  22 Set 2010
• Data do Fascículo
  Fev 2010

Histórico

• Aceito
  15 Jan 2010
• Recebido
  28 Abr 2009