Bioprospecção de rizobactérias promotoras de crescimento em Brachiaria brizantha

Bioprospection of plant growth promoter rhizobacteria in Brachiaria brizantha

FORRAGICULTURA

Bioprospecção de rizobactérias promotoras de crescimento em Brachiaria brizantha

Bioprospection of plant growth promoter rhizobacteria in Brachiaria brizantha

Fabio Fernando de Araujo^I; Luciana Machado Guaberto^I; Iassanã Francisco da Silva^II

^IFaculdade de Ciências Agrárias - UNOESTE, Presidente Prudente, SP

^IIPrograma de Pós-Graduação em Produção Vegetal - Agronomia da FCA/UNOESTE

RESUMO

Objetivou-se selecionar e caracterizar bactérias do gênero Bacillus em rizosfera de Brachiaria brizantha como promotoras de crescimento de plantas e correlacionar os diferentes critérios de seleção das bactérias utilizados em laboratório e casa-de-vegetação. Após coleta de amostras de plantas em três municípios da região oeste de São Paulo, foram realizados o isolamento de bactérias da rizosfera e posterior caracterização fenotípica quanto ao potencial de colonização de raízes de braquiária, antagonismo a fungos fitopatogênicos, produção de auxinas, fosfatases e proteases, além da caracterização genotípica utilizando a técnica de PCR-RAPD. Como avaliação final dos isolados bacterianos foi realizado experimento em casa-de-vegetação com inoculação de sementes e cultivo de Braquiaria brizantha com efetivação de três cortes, durante 180 dias. O experimento foi distribuído em delineamento inteiramente casualizado com quatro repetições. Dos 45 isolados de Bacillus sp. avaliados, sete foram competentes para colonização radicular e três (1A, 2B e 6A) foram capazes de promover o crescimento de Brachiaria brizantha, na média de três cortes efetuados na cultura. A avaliação da produção de auxinas e fosfatases foi relevante no protocolo de seleção dos isolados de Bacillus sp. como promotores de crescimento de plantas. A produção de proteases foi detectada em todos os isolados avaliados, mas não houve correlação desta característica com o crescimento das plantas.

Palavras-chave: atividade enzimática, Bacillus sp., pastagens, rizosfera

ABSTRACT

This study proposed to select and characterize bacteria of the genus Bacillus on rhizosphere of Brachiaria brizantha as plant growth promoters and to correlate the different selection criteria of the bacteria utilized in laboratories and greenhouse. After collecting samples of plants in three municipalities of Sao Paulo, bacteria were isolated from the rhizosphere and subsequent phenotypic characterization was carried out, regarding the potential for colonization of the roots of pasture, antagonism to pathogenic fungi, production of auxins, phosphatases and proteases in addition to the genotypic characterization using PCR-RAPD. As final evaluation of Bacillus sp. isolates, a greenhouse experiment was performed with seed inoculation and cultivation of Brachiaria brizantha with three harvests, during 180 days. The experiment was distributed in completely randomized design with four replications. Of the 45 isolates of Bacillus sp. evaluated, seven were able to root colonization and three (1A, 2B and 6A) were able to promote the growth of Brachiaria brizantha, on the average of three harvests. The evaluation of auxin and phosphatase production was important in the selection protocol of Bacillus sp. to promote plant growth. Protease production was detected in all isolates, but there was no correlation of this characteristic with plant growth.

Key Words: Bacillus sp., enzymatic activity, pastures, rhizosphere

Introdução

As pastagens são o principal componente das dietas de ruminantes e a fonte de alimentação mais econômica nos sistemas pecuários (Skonieski et al., 2011). Com isso, torna-se prioridade aumentar a utilização das forragens via otimização do consumo e da disponibilidade de seus nutrientes(Gomes Júnior et al., 2002). Neste sentido, as novas tecnologias que visam o aumento de rendimento das pastagens com baixo custo são essenciais para adoção no manejo dessas culturas (Itzigsohn et al., 2000).

As rizobactérias que habitam o solo e são promotoras do crescimento de plantas (RPCPs) são com frequência isoladas da rizosfera de diversas plantas cultivadas. Entre os gêneros mais estudados, destacam-se: Bacillus, Pseudomonas, Azospirillum e Rhizobium. Os efeitos desses microrganismos sobre o desenvolvimento das plantas são amplos e incluem os efeitos benéficos na germinação de sementes, emergência de plântulas e crescimento das plantas (Figueiredo et al., 2010).

A influência das rizobactérias no crescimento das plantas tem sido atribuída a efeitos indiretos associados ao controle biológico de patógenos secundários (Araujo et al., 2005). No entanto, em alguns trabalhos, a promoção de crescimento de plantas, por rizobactérias, também tem sido relacionada à produção de fitohormônios e enzimas líticas (Vassilev et al., 2006).

Poucos estudos foram conduzidos com a inoculação de sementes de pastagens com rizobactérias promotoras de crescimento, contudo Itzigsohn et al. (2000) mostraram que a inoculação da bactéria diazotrófica Azospirillum spp. em pastagens tem grande potencial para se tornar uma técnica aplicável, principalmente em condições de déficit hídrico e/ou baixa fertilidade. Nestas situações rizobactérias que produzem hormônios podem mudar a morfologia radicular e aumentar sua biomassa, ampliando com isso a capacidade de exploração do solo (Malik et al., 1997). Araujo (2008), em estudo de inoculação de Bacillus subtilis em diferentes culturas, demonstrou que a inoculação aumentou significativamente o teor de nitrogênio no tecido foliar de milho, mesmo considerando que a espécie bacteriana introduzida não é diazotrófica, porém já foi caracterizada como produtora de hormônios (Araujo et al., 2005).

Objetivou-se selecionar e caracterizar bactérias do gênero Bacillus em rizosfera de Brachiaria brizantha como promotoras de crescimento de plantas e correlacionar os diferentes critérios de seleção das bactérias utilizados em laboratório e casa-de-vegetação.

Material e Métodos

O experimento foi conduzido no laboratório de microbiologia e na casa-de-vegetação da Faculdade de Ciências Agrárias da Universidade do Oeste Paulista UNOESTE, em Presidente Prudente, São Paulo, durante os meses de junho de 2009 a fevereiro de 2010. Foram coletadas amostras de Brachiaria brizantha em áreas de pastagens estabelecidas há mais de dois anos em três municípios da região oeste de São Paulo, (Pirapozinho - 22º16'55" S 51º29'51" W; Dumontina - 22º19'00" S 51º40'01" W e Tarabai- 22º17'22" S 51º32'08"). A região apresenta-se com altitude média de 450 m e predominância de solos arenosos. O clima da região é classificado, com base no sistema de Koppen, como Cwa, mesotérmico, de inverno seco, em que a temperatura média do mês mais frio é inferior a 18 ºC e a do mês mais quente ultrapassa 25 ºC.

Foram coletadas em cada município 12 amostras de plantas, sendo escolhidas quatro plantas em três áreas diferentes. As plantas foram transportadas para o laboratório, onde as raízes foram separadas da parte aérea para isolamento de bactérias do gênero Bacillus, conforme descrito em Coelho et al. (2007) e Buchanan & Gibbons (1975). Para isso, as raízes foram lavadas rapidamente em água corrente e, em seguida, com o solo que permaneceu aderido, foram colocadas em erlenmeyers com 100 mL de solução salina (MgSO₄ 7H₂O 0,01 M) esterilizada previamente. O conjunto raiz + solo que permaneceu aderido foi considerado ambiente rizosférico. O conjunto foi então submetido a 30 minutos de agitação (120 rpm, 28 ºC) em agitador orbital mecânico. Em seguida, foram realizadas quatro diluições sucessivas a partir da coleta de 1,0 mL da suspensão do interior do frasco, empregando-se tubos de ensaio com 9 mL de solução salina estéril e efetivando-se a transferência de 1 mL de um tubo para o outro. Os tubos foram então submetidos a choque térmico a 80 º C por vinte minutos, visando selecionar bactérias termoresistentes, critério imprescindível para diferenciar Bacillus spp. dos demais possíveis isolados, devido a presença de esporos de resistência (Bettiol, 1995). Dos tubos da última e penúltima diluição foi retirado 0,1 mL que foi espalhado na superfície de meio de cultura ágar nutriente (3 g L^-1 de extrato de levedura, 5 g L^-1 de peptona e 15 g L^-1 de ágar), em placas de Petri, que foram posteriormente incubadas em estufa a 28 º C, durante 72 horas. Após isto foram isoladas colônias confirmadas posteriormente como pertencentes ao gênero Bacillus de acordo com Buchanan & Gibbons (1975). Após caracterização das culturas bacterianas como gram positivas e formadoras de endosporos, visualizados por microscopia de contraste de fase (1000x), chegou-se ao total de 45 isolados de Bacillus sp.

Na etapa posterior, foi verificada a capacidade de colonização das raízes de Brachiaria, critério imprescindível para recomendação das bactérias como promotoras de crescimento de plantas (Benizri et al., 2001). Para isto foi efetivado o teste de colonização de raízes em tubos com agar-água, conforme descrito por Romeiro (2007). Sementes de braquiaria foram desinfestadas previamente e em seguida transferidas para tubos de ensaio (2 sementes por tubo), contendo meio agar-água (0,6% de Agar). Os tubos foram mantidos em câmara de crescimento, sem luz, durante 3 a 4 dias até a emissão da radícula. Após isto introduziu-se 0,1 mL de suspensão bacteriana próximo à radícula. Os tubos de ensaio foram mantidos sob a luminosidade e temperatura ambiente, sendo observados diariamente para avaliação visual da colonização radicular, a qual é representada por uma zona túrbida, de aspecto leitoso, delgada, em volta das raízes (Romeiro, 2007). Nesta etapa foram selecionados apenas sete isolados bacterianos que confirmaram a colonização radicular de Brachiaria, de acordo com o critério estabelecido, o qual é importante para o estabelecimento da bactéria na rizosfera (Benizri et al., 2001).

Como forma de caracterização fenotípica dos sete isolados selecionados quanto a atividades bioquímica de importância agrícola, foram realizados ensaios em laboratório quanto ao antagonismo a fungos fitopatogênicos, produção de auxinas, fosfatases e proteases. Inicialmente, para avaliar o antagonismo, foi utilizado o método de pareamento em placas de Petri contendo o meio Batata Dextrose Agar (BDA) segundo metodologia descrita por Araujo et al. (2005). Foram utilizados os seguintes fungos fitopatogênicos: Aspergillus niger (Isolado LMU 12) isolado originalmente de sementes de milho e Fusarium oxysporum f. sp. vasinfectum raça 1 (Isolado LFB 37), cedido pelo Dr. Nilton L. Souza, UNESP, Botucatu, SP, ambos depositados na coleção do laboratório de fitopatologia da Unoeste, São Paulo. Os fungos foram multiplicados em meio de cultura agar batata durante sete dias. Após este período, discos com diâmetro de 5 mm contendo o micélio do fungo foram introduzidos em quatro pontos equidistantes em placa de Petri, com meio BDA, 24 horas antes da inoculação do isolado de Bacillus no centro da placa. Cada isolado foi avaliado em triplicata. As placas foram incubadas em estufa a 28 ºC por sete dias. Após este período, foi observada a formação ou não de zona de inibição entre o isolado bacteriano e o fungo fitopatogênico.

A produção de auxinas pelos isolados bacterianos baseou-se na avaliação de AIA (ácido indol-acético) pelo método colorimétrico (Radwan et al., 2005), onde inicialmente as bactérias foram cultivadas em erlenmeyers com 50 mL de meio líquido TSB (Trypticase Soy Broth, Oxoid^®) suplementado com 10 g L^-1 de dextrose, 5g L^-1 de extrato de levedura e 5mM de L-triptófano (1000 ug mL^-1). O meio de cultura após inoculação com os isolados, em triplicata, foi mantido a 28 ºC no escuro, sob agitação constante (120 rpm), durante 24 horas. Após este período, foram coletados 10 mL da suspensão bacteriana e realizada centrifugação a 10.000 g durante 10 minutos, para obtenção do sobrenadante. A quantidade de AIA por mL foi estimada pela mistura de 5 mL de reagente de Salkowski (Ehmann, 1977) com 1 mL do sobrenadante de cada isolado e após 30 minutos foi realizada a leitura da absorbância (500 nm). A concentração final de AIA no meio foi determinada utilizando-se uma curva padrão. A produção de fosfatases foi quantificada pela técnica descrita por Romeiro (2007), iniciada pela introdução de porção de cada isolado bacteriano em 25 mL de caldo nutriente (5 g L^-1 de peptona e 3 g L^-1 de extrato de levedura) acondicionado em erlenmeyers que ficaram sob agitação (150 rpm, 28 ºC), durante 24 horas. Após este período, foi coletado em tubo de ensaio 1,5 mL da suspensão bacteriana para centrifugação (10.000 rpm por 20 minutos). Do sobrenadante foi coletado 0,5 mL, que foi adicionado a um tubo de ensaio contendo 2,0 mL de p-nitrofenilfosfato (0,5mM) para avaliação da atividade enzimática. A mistura foi mantida em banho-maria a 37 ºC por 3 horas e adicionada de 2,5 mL de NaOH 1M. A atividade da fosfatase foi então expressa pela leitura de absorbância (410 nm) na suspensão, onde a coloração amarela indica a formação do paranitrofenol e liberação do fosfato.

A análise da produção de proteases extracelulares pelos isolados foi realizada por método semiquantitativo descrito por Thiago & Silva (2007). Com auxilio de alça de platina, os isolados bacterianos foram introduzidos em dois pontos equidistantes de placa de petri contendo meio de Simmons (0,2 g L^-1 de MgSO₄; 1,0 g L^-1 de NH₄H₂PO₄; 2,0 g L^-1 de K₂HPO₄; 2,0 g L^-1 de citrato de sódio; 5,0 g L^-1 de NaCl e 15 g L^-1 de agar) acrescido de caseína (1,0 g L^-1), em triplicata. As placas foram incubadas estufa com controle de temperatura e luminosidade por 10 dias a 26 ºC. Após este período, adicionou-se nas placas solução de ácido tricloroacético (10% v v^-1) para revelação dos halos de degradação que indicaria a ação das proteases sobre a caseína. A atividade proteolítica foi determinada pelo índice de revelação enzimática (IRE = D/d), em que D = diâmetro total (colônia + halo) e d = (diâmetro da colônia).

Visando à caracterização genotípica dos isolados bacterianos utilizou-se a técnica do PCR-RAPD, onde inicialmente procedeu-se à extração de DNA genômico das bactérias pelo método CTAB de Doyle & Doyle (1990) com adaptações. Para isto foram transferidos 20 mg de células, previamente centrifugadas e lavadas com água estéril, de cada isolado para tubos Eppendorf de 1,5 mL contendo 500 μL de tampão CTAB (CTAB 2%; NaCl 1,4 M; Tris-HCL 100 mM, pH 8,0; EDTA 20 mM) e levados para banho seco a 65 ºC por 30 minutos, sendo homogeneizado em vortex^® a cada 10 minutos. Em seguida acrescentou-se clorofórmio:álcool isoamílico (24:1) na mesma proporção do CTAB e homogeneizou-se por inversão. As amostras foram então centrifugadas a 12.000 rpm por 10 minutos e o sobrenadante foi retirado e transferido para outros tubos Eppendorf, acrescentando-se 240 μL de isopropanol absoluto a -20 ºC homogeneizando por inversão, sendo mantido nesta temperatura por 24 horas. Posteriormente o material foi centrifugado a 14000 rpm por 5 minutos, o sobrenadante desta vez foi descartado e o precipitado (pellet de DNA) lavado com 500 μL de etanol 70% a 8 ºC, centrifugando-se novamente a 5.000 rpm por 5 minutos. O etanol foi descartado e o precipitado seco em fluxo de ar à temperatura ambiente. O DNA foi hidratado em 100 μL de tampão TE e levado a banho seco por 30 minutos a 55 ºC. O DNA genômico foi, então, submetido à quantificação pela técnica de eletroforese em gel de agarose a 1.0% utilizando-se o tampão de corrida TBE ¹/₂ X, embebido em brometo de etídeo e visualizados em câmara com iluminação ultravioleta (câmara CCD Alpha-Inmotech).

O DNA genômico obtido foi então amplificado pelo método de RAPD (Williams et al., 1990) utilizando-se 11 primers decâmeros de combinações arbitrarias com as seguintes seqüências 5'-3': A1 (CAGGCCCTTC), A2 (TGCCGAGCTG); A11 (CAATCGCCGT), A18 (AGGTGACCGT), C2 (GTGAGGCGTC), C5 (GATGACCGCC), C7 (GTCCCGACGA), C8 (TGGACCGGTG), C11 (AAAGCTCGTC), C13 (AAGCCTCGTC) e C20 (ACTTCGCCAC) previamente selecionados, da OPERON Technologies Inc. O volume de reação foi de 25 μL, contendo 18,4 μL de Água Mili Q; 2,5 μL de Tampão (10 X); 2 mM de MgCl₂; 200 μM de DNTP; 10 pmols do primer (oligonucleotídeo); 1 U de Taq DNA polimerase; e 1,0 μL de DNA (100 ng). As reações de RAPD ocorreram em termociclador MJ - PTC 100 programado para desnaturação inicial de 94 ºC por 5 minutos, com 48 ciclos constituídos por: desnaturação a 92 ºC por 30 segundos; anelamento a 37 ºC por 1 minuto e 30 segundos a 72 ºC para extensão final. Os produtos da amplificação foram submetidos a eletroforese em gel de agarose a 1,2%, corado com brometo de etídeo utilizando o tampão de corrida TBE 1/2 X com marcador Ladder Invitrogen 100pb. O gel foi visualizado em câmara com iluminação ultravioleta (câmara CCD Alpha-Inmotech) sendo as imagens capturadas pelo software ChemiImager^®. Foi extraído também, pelo método Doyle & Doyle (1990), com posterior amplificação por RAPD, o DNA de isolados de Xanthomonas campestris, Aspergillus niger e duas estirpes de Bacillus subtilis AP-3 e A3-5 (Araujo et al., 2005). As bandas de DNA foram analisadas quanto à presença e ausência em cada isolado. A matriz de similaridade foi construída de acordo com o programa NTSYS 2.0 pelo agrupamento UPGMA.

Como avaliação final dos isolados bacterianos, foi conduzido um experimento em casa-de-vegetação durante 180 dias objetivando-se avaliar os mesmos como inoculantes paraBrachiaria brizantha(Hochst ex A. Rich.) Stapf. cv. Marandú. Utilizou-se um argissolo vermelho distroférrico (EMBRAPA, 1999) coletado na camada 0-20 cm de profundidade, seco ao ar e passado em peneira (2 mm). Posteriormente, procederam-se ao enchimento dos vasos de 4 dm³ e à coleta de amostra para caracterização de atributos químicos (Raij et al.,2001), encontrando-se os seguintes valores: pH (CaCl₂ 1 mol L^-1) 6,0; 6 g dm^-3 de M.O.; 38 mg dm^-3 de P_resina; 3,6 mmol dm^-3 de K;c24 mmol dm^-3 de Ca; 8 mmol dm^-3 de Mg; 36 mmol dm^-3 de cccSB; 51 mmol dm^-3 de CTC; 70% de saturação por bases. A ccapacidade de campo do solo desestruturado foi determinada no aparelho extrator de Richards a -0,03 MPa como 175 g kg^-1.Os vasos foram irrigados diariamente para manter o teor de umidade próximo à capacidade de campo, calculada anteriormente utilizando-se do método gravimétrico.

Para inoculação das sementes de braquiária, foi utilizado 1,0 mL de suspensão líquida de cada isolado bacteriano em 10 g de sementes. Para obtenção do inóculo, os isolados foram multiplicados em tubos com meio de cultura sólido durante sete dias e acrescidos de 5 mL de água estéril no interior dos tubos com posterior raspagem das bactérias. Os inóculos de cada isolado foram padronizados utilizando-se espectrofotometria com a finalidade de manter a concentração aproximada de 1,0.10⁸ bactérias mL^-1 para cada isolado (Romeiro, 2007). Para semeadura, utilizaram-se dez sementes por vaso. Após a emergência das plantas, foi realizado o desbaste deixando-se duas plantas por vaso. O delineamento experimental empregado foi o inteiramente casualizado com medidas repetidas no tempo, com oito tratamentos (sete isolados e uma testemunha), três períodos de cortes e quatro repetições.

O período experimental iniciou-se com o corte de uniformização, aos 42 dias após a semeadura, deixando-se as plantas com altura aproximada de 10 cm. Após isto foram efetuados três cortes, a 10 cm de altura da superfície do solo, a cada 45 dias, para avaliar o número de perfilhos por vaso, a área foliar, em aparelho medidor de área foliar portátil modelo LI-3000A (LI-COR,USA), matéria seca da parte aérea, por secagem em estufa (65 ºC) com circulação de ar até massa constante e a razão da área foliar (RAF), obtida pela divisão da área foliar pela massa seca da parte aérea.

Os dados foram submetidos à análise de variância e ao teste F pelo Mixed Procedure (PROC MIXED) do pacote estatístico SAS (versão 8.0). Para a escolha da matriz de variância e covariância, utilizou-se o critério de informação de Akaike. As médias dos tratamentos foram comparadas pelo teste de Tukey. As variáveis bioquímicas obtidas com isolados bacterianas foram correlacionadas com todas as variáveis fitotécnicas utilizando-se a análise de correlação de Pearson. Adotou-se α = 0,05.

Resultados e Discussão

Apenas o isolado 1B não propiciou antagonismo a uma espécie de fungo fitopatogênico, enquanto o isolado 6B apresentou antagonismo às duas espécies avaliadas (Tabela 1). Os isolados bacterianos 1A e 3A foram os que apresentaram maior potencial quanto à produção de ácido-indol-acético (AIA) e, de acordo com o critério estabelecido por Barazani & Friedman (1999), podem ser considerados eficientes produtores de auxinas. O isolado 6A foi o que apresentou maior potencial na produção de fosfatases, enquanto o 1B proporcionou maior produção de proteases.

A análise de PCR-RAPD revelou, pelos coeficientes de similaridade próximos a 30%, encontrados nos diferentes agrupamentos, considerável heterogeneidade genética entre os isolados bacterianos (Figura 1). Apesar de a análise de PCR-RAPD não ser muito útil para relacionamento ou identificação de espécies, pode servir para mostrar, pelo polimorfismo encontrado, a alta ou baixa heterogeneidade genética entre os isolados, segundo Matarante et al. (2004). Esses mesmos autores, com a utilização do PCR-RAPD, encontraram coeficientes de similaridade que variaram de 12 a 99% dentro do gênero Bacillus.

O polimorfismo de RAPD depende da configuração de primersutilizados e de seus produtos de amplificação. Quanto maior for esse número, maiores serão as chances de se detectar polimorfismo e consequentemente os resultados serão mais confiáveis (Olive & Bean, 1999). Dos 11 primers utilizados neste estudo, dois (A1 e A11) se destacaram como de maior amplificação de bandas e podem ser úteis nas análises de relacionamento genético de Bacillus.

No experimento com plantas, houve efeito significativo (P<0,01) para o período de corte em todas as variáveis testadas, entretanto não ocorreram interações entre os períodos de corte e os tratamentos com isolados bacterianos. Houve significância (P<0,05) para isolados bacterianos na comparação efetuada dentro das médias marginais nas variáveis: massa seca da parte aérea, perfilhamento e área foliar das plantas (Tabelas 2 e 3).

A inoculação do isolado de Bacillus 6A proporcionou maior produção de massa seca na parte aérea, na média dos três cortes efetuados (Tabela 2). Este resultado comprova o potencial de promoção de crescimento de plantas por Bacillus sp. já encontrado em vários estudos com diferentes culturas (Araujo & Guerreiro, 2010; Figueiredo et al., 2010; Araujo, 2008; Coelho et al., 2007; Malik et al., 1997).

O perfilhamento da planta, na média final, aumentou com inoculação dos isolados 1A e 2B comparando-se à testemunha (Tabela 2). Esses isolados também se destacaram como produtores de auxinas (Tabela 1). De acordo com Gomide (1988), o perfilhamento é diretamente influenciado pelas auxinas, como também Taiz & Zeiger (2004) relataram que as auxinas são os únicos fitorreguladores que aumentam a formação de primórdios radiculares. Incrementos no perfilhamento também já foram encontrados em outras gramíneas após inoculação com Bacillus spp. (Afzal et al., 2005; Latake et al., 2009)

Apenas o isolado 2B proporcionou incremento de área foliar na gramínea quando comparado à testemunha (Tabela 3). Contudo, a razão de área foliar (RAF) não foi alterada significativamente por nenhum tratamento. Kelemu et al. (2011) avaliando a inoculação de B. brizantha com três estirpes bacterianas, originalmente isoladas de um híbrido de Brachiaria, também encontraram aumento de cerca de 50 % na área foliar das plantas.

Os isolados de Bacillus sp. 1A, 2B e 6A destacaram-se como promotores de crescimento de Brachiaria brizantha.Pela aplicação do teste de correlação de Pearson entre as diferentes variáveis analisadas (Tabela 4), verificou-se que a produção de fosfatase e AIA proporcionada pelos sete isolados bacterianos avaliados in vitro apresentou maior correlação com a produção média de massa seca nas plantas (r = 0,61, P<0,05) e com a razão de área foliar (r = 0,65, P<0,05), respectivamente. Em estudo de bioprospecção de Bacillus sp. na cultura do milho, Araujo & Guerreiro (2010) concluíram que a maior produção de AIA não foi uma característica principal dos melhores isolados bacterianos que promoveram o crescimento do milho. Entretanto, Khalid et al. (2004) relataram correlação positiva entre a produção de auxina in vitro e o aumento do crescimento das plantas após a inoculação das rizobactérias. Com relação à atividade de solubilização de fósforo encontrada em isolados bacterianos e a correlação com parâmetros fitotécnicos, Idris et al. (2009) encontraram correlação significativa apenas com massa seca da raiz em sorgo.

Vários estudos tem sugerido que o modo de ação do antagonismo a fungos está relacionado à promoção de crescimento de plantas (Araujo et al., 2005; Idris et al., 2009; Bettiol, 1995; Romeiro, 2007; Vassilev et al., 2006). Neste estudo, todos os isolados bacterianos foram antagônicos a pelo menos uma espécie de fungo avaliado (Tabela 1). Apenas um isolado bacteriano (6B) foi antagônico às duas espécies de fungos, porém não proporcionou ganhos no crescimento deB. brizantha quando inoculado previamente nas sementes desta espécie.

O protocolo de bioprospecção utilizado neste trabalho propiciou o isolamento de Bacillus spp. promissores para uso na inoculação de sementes de Brachiaria. A correlação significativa encontrada entre a presença dos isolados produtores de fosfatases e AIA e o aumento no crescimento das plantas sugere que estes critérios podem ser utilizados em outros programas de seleção. Além disso, o critério do antagonismo a fungos pode também ser útil na seleção das rizobactérias. Por outro lado, a produção de proteases nos isolados não se configurou como mecanismo importante para avaliar o desempenho das bactérias. Estudos adicionais podem ser conduzidos para elucidar a participação dos isolados bacterianos em outros modos de ação relacionados à promoção de crescimento das plantas.

Conclusões

Existem bactérias na rizosfera de Brachiaria que são caracterizadas como Bacillus sp. e podem promover o crescimento das plantas quando inoculadas previamente nas sementes. A avaliação de produção de auxinas e fosfatases mostra-se relevante para os protocolos de seleção dos isolados de Bacillus sp. como promotores de crescimento de Brachiaria brizantha.

Recebido em 6/8/2010 e aprovado em 9/9/2011.

Correspondências devem ser enviadas para: [e-mail]

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  25 Abr 2012
• Data do Fascículo
  Mar 2012

Histórico

• Recebido
  06 Ago 2010
• Aceito
  09 Set 2011