Morpho-anatomic of adventitious rhizogenesis in mini-cuttings of Eucalyptus grandis x Eucalyptus urophylla

The present work aimed to accomplish the histological analysis of the events involved in the adventitious rooting pattern of four Eucalyptus grandis x Eucalyptus urophylla clones. The mini-cuttings were collected from a mini-stump and the rooting experiments were set up under mini-hedge indoor semi-hydroponics by means of intermittent flooding fertirrigation. For histological analyses, the proximal ends of the mini-cuttings were collected after 0, 1, 2, 4, 6, 8, 10, and 12 days after planting them at greenhouse. After fixation with FAA_70%, the samples were dehydrated in a graded ethanol series and infiltrated overnight in metracrilate resin, and finally embedded in resin. It was verified the endogenous origin of adventitious root primordia from vascular cambium, and in some cases, the formation and proliferation of calli at the proximal end of the mini-cuttings within 8 to 12 days.

mini-cuttings; vegetative propagation; anatomy

Authorship

Patrícia Bueno Goulart

Engenheira Florestal, Msc., Programa de Pós-Graduação em Ciência Florestal, Universidade Federal de Viçosa, Campus Universitário, s/n, CEP 36570-000, Viçosa (MG), Brasil. pbgoulart@uol.com.brUniversidade Federal de ViçosaBrasilViçosa, MG, BrasilEngenheira Florestal, Msc., Programa de Pós-Graduação em Ciência Florestal, Universidade Federal de Viçosa, Campus Universitário, s/n, CEP 36570-000, Viçosa (MG), Brasil. pbgoulart@uol.com.br

Aloisio Xavier

Engenheiro Florestal, Dr., Professor Associado do Departamento de Engenharia Florestal, Universidade Federal de Viçosa, Campus Universitário, s/n, CEP 36570-000, Viçosa (MG), Brasil. xavier@ufv.brUniversidade Federal de ViçosaBrasilViçosa, MG, BrasilEngenheiro Florestal, Dr., Professor Associado do Departamento de Engenharia Florestal, Universidade Federal de Viçosa, Campus Universitário, s/n, CEP 36570-000, Viçosa (MG), Brasil. xavier@ufv.br

Lourdes Iarema

Bióloga, Dr., Analista Ambiental do Instituto Chico Mendes de Conservação da Biodiversidade, Parque Nacional do Juruena, Av. Ludovico da Riva Neto, 2364, Centro, CEP 78580-000, Alta Floresta (MT), Brasil. lourdesiarema@yahoo.com.brInstituto Chico Mendes de Conservação da BiodiversidadeBrasilAlta Floresta, MT, BrasilBióloga, Dr., Analista Ambiental do Instituto Chico Mendes de Conservação da Biodiversidade, Parque Nacional do Juruena, Av. Ludovico da Riva Neto, 2364, Centro, CEP 78580-000, Alta Floresta (MT), Brasil. lourdesiarema@yahoo.com.br

Wagner Campos Otoni

Engenheiro Agrônomo, Dr., Professor Associado do Departamento de Biologia Geral, Universidade Federal de Viçosa, Campus Universitário, s/n, CEP 36570-000 Viçosa (MG), Brasil. wotoni@ufv.brUniversidade Federal de ViçosaBrasilViçosa, MG, BrasilEngenheiro Agrônomo, Dr., Professor Associado do Departamento de Biologia Geral, Universidade Federal de Viçosa, Campus Universitário, s/n, CEP 36570-000 Viçosa (MG), Brasil. wotoni@ufv.br

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Figura 1.
Miniestacas e micrografias de cortes histológicos na base de miniestacas do clone H1 após coleta das mesmas sem efetuar o plantio no substrato (A, B e C); e miniestacas coletadas 1 (D, E e F); 2 (G, H e I); e 4 (J, K e L) dias após o plantio em substrato. B, E, H e K: cortes transversais. C, F, I e L: cortes longitudinais. Id = idioblastos com óleo; Ep = epiderme; Fl = floema secundário; Md = medula; Pc = parênquima cortical; Xl = xilema secundário. Barras: A, D, G e J = 10 mm; B, H e F = 30 µm; C e I = 50 µm; E = 31 µm; K = 23 µm; L = 64 µm.

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Figura 2.
Miniestacas e micrografias de cortes histológicos na base de miniestacas do clone H1 aos 6 (A, B e C); 8 (D, E, F e G); 10 (H, I, J e K); e 12 dias (L, M e N) após o plantio em substrato. B, E, F, I, J e M: cortes transversais. C, G, K e N: cortes longitudinais. I e M: detalhes do corte transversal da miniestaca mostrando o desenvolvimento e a formação endógena do primórdio radicular a partir do câmbio vascular (Cv). Id = idioblastos com óleo; Ep = epiderme; Fl = floema secundário; Md = medula; Pc = parênquima cortical; Xl = xilema secundário. Barras: A, D, H e L = 10 mm; B = 38 µm; C = 52 µm; E, I = 55 µm; F = 23 µm; G, N = 64 µm; J = 24 µm; K = 80 µm; M = 45 µm.

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Figura 3.
Miniestacas e micrografias de cortes histológicos na base de miniestacas do clone H2 aos 6 (A, B e C); 8 (D, E e F); 10 (G, H, I e J); e 12 (K, L, M e N) dias após o plantio em substrato. B, R, H, I, L e M: cortes transversais. C, F, J e N: cortes longitudinais. I e M: detalhes do corte transversal da miniestaca mostrando o desenvolvimento e a formação endógena do primórdio radicular a partir do câmbio vascular (Cv). Id = idioblastos com óleo; Ep = epiderme; Fl = floema secundário; Md = medula; Pc = parênquima cortical; Xl = xilema secundário. Barras: A, D, G e K = 10 mm; B = 37 µm; C = 43 µm; E = 38 µm; F = 64 µm; H = 54 µm; I = 23 µm; J = 81 µm; L = 54 µm; M = 40 µm; N = 81 µm.

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Figura 4.
Miniestacas e micrografias de cortes histológicos na base de miniestacas do clone H3 aos 6 (A, B e C); 8 (D, E, F e G); 10 (H, I, e J); e 12 (K, L e M) dias após o plantio em substrato. B, E, I, L e M: cortes transversais. C, F, G e J: cortes longitudinais. F e G: detalhes do corte longitudinal da miniestaca mostrando um primórdio radicular seccionado transversalmente. I, L e M: detalhe do corte transversal da miniestaca mostrando a proliferação e a formação de uma massa de células desorganizadas (calos) próximo ao câmbio vascular (Cv). Id = idioblastos com óleo; Ep = epiderme; Fl = floema secundário; Md = medula; Pc = parênquima cortical; Xl = xilema secundário. Barras: A, D, H e K = 10 mm; B = 31 µm; C = 50 µm; E = 37 µm; F = 81 µm; G = 26 µm; I = 46 µm; J = 53 µm; L = 55 µm; M = 29 µm.

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Figura 5.
Miniestacas e micrografias de cortes histológicos na base de miniestacas do clone H4 aos 6 (A, B e C); 8 (D, E e F); 10 (G, H, I e J); e 12 (K, L, M e N) dias após o plantio em substrato. B, E, H, I, L e M: corte transversal. C, F, J e N: cortes longitudinais. L e M: detalhes do corte transversal da miniestaca mostrando a proliferação e a formação de calo nas proximidades do câmbio vascular (Cv) e floema secundário (Fl). Id = idioblastos com óleo; Ep = epiderme; Fl = floema secundário; Md = medula; Pc = parênquima cortical; Xl = xilema secundário. Barras: A, D, G e K = 10 mm; B = 37 µm; C = 43 µm; E = 45 µm; F = 46 µm; H = 55 µm; I = 30 µm; J = 81 µm; L = 55 µm; M = 58 µm; N = 66 µm.

Figura 1. Miniestacas e micrografias de cortes histológicos na base de miniestacas do clone H1 após coleta das mesmas sem efetuar o plantio no substrato (A, B e C); e miniestacas coletadas 1 (D, E e F); 2 (G, H e I); e 4 (J, K e L) dias após o plantio em substrato. B, E, H e K: cortes transversais. C, F, I e L: cortes longitudinais. Id = idioblastos com óleo; Ep = epiderme; Fl = floema secundário; Md = medula; Pc = parênquima cortical; Xl = xilema secundário. Barras: A, D, G e J = 10 mm; B, H e F = 30 µm; C e I = 50 µm; E = 31 µm; K = 23 µm; L = 64 µm.

Figura 2. Miniestacas e micrografias de cortes histológicos na base de miniestacas do clone H1 aos 6 (A, B e C); 8 (D, E, F e G); 10 (H, I, J e K); e 12 dias (L, M e N) após o plantio em substrato. B, E, F, I, J e M: cortes transversais. C, G, K e N: cortes longitudinais. I e M: detalhes do corte transversal da miniestaca mostrando o desenvolvimento e a formação endógena do primórdio radicular a partir do câmbio vascular (Cv). Id = idioblastos com óleo; Ep = epiderme; Fl = floema secundário; Md = medula; Pc = parênquima cortical; Xl = xilema secundário. Barras: A, D, H e L = 10 mm; B = 38 µm; C = 52 µm; E, I = 55 µm; F = 23 µm; G, N = 64 µm; J = 24 µm; K = 80 µm; M = 45 µm.

Figura 3. Miniestacas e micrografias de cortes histológicos na base de miniestacas do clone H2 aos 6 (A, B e C); 8 (D, E e F); 10 (G, H, I e J); e 12 (K, L, M e N) dias após o plantio em substrato. B, R, H, I, L e M: cortes transversais. C, F, J e N: cortes longitudinais. I e M: detalhes do corte transversal da miniestaca mostrando o desenvolvimento e a formação endógena do primórdio radicular a partir do câmbio vascular (Cv). Id = idioblastos com óleo; Ep = epiderme; Fl = floema secundário; Md = medula; Pc = parênquima cortical; Xl = xilema secundário. Barras: A, D, G e K = 10 mm; B = 37 µm; C = 43 µm; E = 38 µm; F = 64 µm; H = 54 µm; I = 23 µm; J = 81 µm; L = 54 µm; M = 40 µm; N = 81 µm.

Figura 4. Miniestacas e micrografias de cortes histológicos na base de miniestacas do clone H3 aos 6 (A, B e C); 8 (D, E, F e G); 10 (H, I, e J); e 12 (K, L e M) dias após o plantio em substrato. B, E, I, L e M: cortes transversais. C, F, G e J: cortes longitudinais. F e G: detalhes do corte longitudinal da miniestaca mostrando um primórdio radicular seccionado transversalmente. I, L e M: detalhe do corte transversal da miniestaca mostrando a proliferação e a formação de uma massa de células desorganizadas (calos) próximo ao câmbio vascular (Cv). Id = idioblastos com óleo; Ep = epiderme; Fl = floema secundário; Md = medula; Pc = parênquima cortical; Xl = xilema secundário. Barras: A, D, H e K = 10 mm; B = 31 µm; C = 50 µm; E = 37 µm; F = 81 µm; G = 26 µm; I = 46 µm; J = 53 µm; L = 55 µm; M = 29 µm.

Figura 5. Miniestacas e micrografias de cortes histológicos na base de miniestacas do clone H4 aos 6 (A, B e C); 8 (D, E e F); 10 (G, H, I e J); e 12 (K, L, M e N) dias após o plantio em substrato. B, E, H, I, L e M: corte transversal. C, F, J e N: cortes longitudinais. L e M: detalhes do corte transversal da miniestaca mostrando a proliferação e a formação de calo nas proximidades do câmbio vascular (Cv) e floema secundário (Fl). Id = idioblastos com óleo; Ep = epiderme; Fl = floema secundário; Md = medula; Pc = parênquima cortical; Xl = xilema secundário. Barras: A, D, G e K = 10 mm; B = 37 µm; C = 43 µm; E = 45 µm; F = 46 µm; H = 55 µm; I = 30 µm; J = 81 µm; L = 55 µm; M = 58 µm; N = 66 µm.

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