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DOSIMETRIA DE LUZ EFETIVAMENTE ABSORVIDA (DABS) PELO AZUL DE METILENO EM PROCESSOS DE FOTOSSENSIBILIZAÇÃO UTILIZANDO FONTES DE LUZ POLICROMÁTICAS

LIGHT DOSIMETRY EFFECTIVELY ABSORBED (DABS) BY METHYLENE BLUE IN PHOTOSENSITIZATION PROCESSES EMPLOYING POLYCHROMATIC LIGHT SOURCES

Resumo

This work presents an equation concerning effective light doses (Dabs; J cm-2) absorbed by photosensitizer molecules that are involved directly in photochemical and photodynamic processes. These molecules are photostimulated by different polychromatic LED sources with distinct photonic properties. The inherent photosensitizer photobleaching process, source irradiation emission spectrum (wavelength range), light source power, irradiation time, and LED-methylene blue spectral overlap degree were the relevant parameters considered for Dabs. This was performed with an experimental system comprised of methylene blue and its photosensitization ability on substrate DFBF (1,3-diphenylisobenzofuran) photodegradation, starting from different polychromatic LED sources. We demonstrated that such factors significantly affect photosensitizer light absorption, thus influencing the efficiency of a specific photochemical process. This occurs due to the selection of non-optimal experimental conditions associated with less precision from photonic source measurements, and therefore, less control on the actual Dabs. Such insights are interestingly absent in various studies with regards to a plethora of systems.

Keywords:
polychromatic light sources; LED; effective absorbed light dose (Dabs); methylene blue; photosensitization


Keywords:
polychromatic light sources; LED; effective absorbed light dose (Dabs); methylene blue; photosensitization

INTRODUÇÃO

As reações fotoquímicas estão inseridas em uma grande gama de aplicações em diferentes ramos da ciência, como por exemplo: reações de fotopolimerização,11 Xiao, P.; Dumur, F.; Graff, B.; Zhang, J.; Morlet-Savary, F.; Gigmes, D.; Fouassier, J. P.; Lalevee, J.; J. Polym. Sci., Part A: Polym. Chem. 2015, 53, 567. degradação fotocatalítica de poluentes em meio aquoso,22 Agboola, B.; Ozoenema, K. I.; Nyokong, T.; J. Mol. Catal. A: Chem. 2006, 248, 84.

3 Goldstein, S.; Aschengrau, D.; Diamant, Y.; Rabani, J.; Environ. Sci. Technol. 2007, 41, 7486.

4 Kluson, P.; Drobek, M.; Kalaji, A.; Zarubova, S.; Krysa, J.; Rakusan, J.; J. Photochem. Photobiol., A 2008, 199, 267.
-55 Weller, C.; Horn, S.; Herrmann, H.; J. Photochem. Photobiol., A 2013, 255, 41. síntese de moléculas envolvendo etapas com reações fotoquímicas,66 Kim, S. W.; Park, J. H.; Yang, S. D.; Hur, M. G.; Choi, C. W.; Yu, K. H.; Bull. Korean Chem. Soc. 2008, 29, 2023.

7 Hager, B.; Strauss, W. S. L.; Falk, H.; Photochem. Photobiol. 2009, 85, 1206.

8 Lin-Fang, H.; Zeng-Hui, W.; Shi-Lin, C.; Chin. J. Nat. Med. 2014, 12, 81.
-99 Gonçalves, R. S.; Rabello, B. R.; Cesar, G. B.; Pereira, P. C. S., Ribeiro, M. A. S.; Meurer, E. C.; Hioka, N.; Nakamura, C. V.; Bruschi, M. L. Caetano, W.; Org. Process Res. Dev. 2017, 21, 2025. entre outras. No caso específico de aplicações na área da saúde, tem-se observado resultados promissores empregando-se terapias que envolvem processos de absorção de luz, como por exemplo, fotopolimerização odontológica em restauração dentária, fotoesterilização, em processos de regeneração celular fotoinduzida em processos de cicatrização tecidual utilizando inicialmente luz LASER de baixa potência (do inglês Low Level Laser Therapy - LLLT), ou modalidades clínicas recentemente investigadas e exploradas envolvendo, por exemplo, a Terapia Fotodinâmica (TFD) e a Inativação Fotodinâmica de Microrganismos (IFMO).99 Gonçalves, R. S.; Rabello, B. R.; Cesar, G. B.; Pereira, P. C. S., Ribeiro, M. A. S.; Meurer, E. C.; Hioka, N.; Nakamura, C. V.; Bruschi, M. L. Caetano, W.; Org. Process Res. Dev. 2017, 21, 2025.,1010 Bressler, N. M.; Arch. Ophthalmol. 2001, 119, 198. Estas últimas atuam através da fotoexcitação de um composto fotossensibilizador (FS) localizado no tecido afetado (tumor ou infecção) que promove a fotodestruição de células/tecidos tumorais (TFD) ou microrganismos como bactérias, vírus, fungos e protozoários (IFMO), através espécies citotóxicas que danificam substratos biológicos de interesse, como o oxigênio singlete (1O2) e espécies radicalares (O2-• e OH).99 Gonçalves, R. S.; Rabello, B. R.; Cesar, G. B.; Pereira, P. C. S., Ribeiro, M. A. S.; Meurer, E. C.; Hioka, N.; Nakamura, C. V.; Bruschi, M. L. Caetano, W.; Org. Process Res. Dev. 2017, 21, 2025.

10 Bressler, N. M.; Arch. Ophthalmol. 2001, 119, 198.

11 Reis, V. V.; Nonose, D. S. S. L.; Oyama, J.; Lalucci, M. P. P. S.; Demarchi, I. G.; Aristides, S. M. A.; Teixeira, J. J. V.; Silveira, T. G. V.; Lonardoni, M. V. C.; Photodiagn. Photodyn. Ther. 2018, 21, 294.

12 Cizekova, L.; Grolmusova, A.; Ipothova, Z.; Barbierikova, Z.; Brezova, V.; Hunakova, L.; Imrich, J.; Janovec, L.; Dovinova, I.; Paulikova, H.; Bioorg. Med. Chem. 2004, 22, 4684.

13 Agrawal, N.; Ray, R. S.; Farooq, M.; Pant, A. B.; Hans, R. K.; Photochem. Photobiol. 2007, 83, 1226.

14 Li, W. T.; Tsao, H. W.; Chen, Y. Y.; Cheng, S. W.; Hsu, Y. C.; Photochem. Photobiol. Sci. 2007, 6, 1341.

15 Fotinos, N.; Convert, M.; Piffaretti, J. C.; Gurny, R.; Lange, N.; Antimicrob. Agents Chemother. 2008, 52, 1366.

16 Kussovski, V.; Mantareva, V.; Angelov, I.; Orozova, P.; Wohrle, D.; Schnurpfeil, G.; Borisova, E.; Avramov, L.; FEMS Microbiol. Lett. 2009, 294, 133.

17 Zhao, Y.; Xia, Q.; Yin, J. J.; Lin, G.; Fu, P. P.; Toxicol. Lett. 2011, 205, 302.

18 Xu, H.; Liu, C.; Mei, J.; Yao, C.; Wang, S.; Wang, J.; Li, Z.; Zhang, Z.; Int. J. Nanomed. 2012, 7, 5029.

19 Simplicio, F. I.; Maionchi, F.; Hioka, N.; Quim. Nova 2002, 25, 801.
-2020 Tardivo, J. P.; Adami, F.; Correa, J. A.; Pinhal, M. A. S.; Baptista, M. S.; Photodiagn. Photodyn. Ther. 2014, 11, 342. Por exemplo, estudos mostraram resultados importantes na alteração de prognósticos de amputação de membros inferiores de pacientes diabéticos acometidos com infecção, utilizando derivados fenotiazínicos como o azul de metileno (AM) e fontes de irradiação a base de diodos emissores de luz (light emitting diode - LED).2020 Tardivo, J. P.; Adami, F.; Correa, J. A.; Pinhal, M. A. S.; Baptista, M. S.; Photodiagn. Photodyn. Ther. 2014, 11, 342. O AM é um composto fotossensibilizador amplamente empregado em TFD e IFMO, sendo bastante conhecido por sua capacidade de produção de 1O2 e outras espécies reativas na presença de luz, como AM e O2-•, que apresentam alto potencial citotóxico.2020 Tardivo, J. P.; Adami, F.; Correa, J. A.; Pinhal, M. A. S.; Baptista, M. S.; Photodiagn. Photodyn. Ther. 2014, 11, 342.

21 Kasimova, K. R.; Sadasivam, M.; Landi, G.; Sarna, T.; Hamblin, M. R.; Photochem. Photobiol. Sci. 2014, 13, 1541.

22 Macdonald, I. J.; Dougherty, T. J.; J. Porphyrins Phthalocyanines 2001, 5, 105.

23 Junqueira, H. C.; Severino, D.; Dias, L. G.; Gugliotti, M. S.; Baptista, M. S.; Phys. Chem. Chem. Phys. 2002, 4, 2320.
-2424 Severino, D.; Junqueira, H C.; Gugliotti, M.; Gabrielli, D. S.; Baptista, M. S.; Photochem. Photobiol. 2003, 77, 459.

Quanto a sistemas de iluminação empregados em fotorreações ou fotoprocessos em geral, tem-se observado o emprego crescente de LEDs em substituição às fontes de luz tradicionais, como por exemplo, LASERs (fontes monocromáticas bastante empregadas previamente em TFD) e lâmpadas de halogênio ou de vapor de mercúrio (fontes policromáticas empregadas em diversas fotorreações).11 Xiao, P.; Dumur, F.; Graff, B.; Zhang, J.; Morlet-Savary, F.; Gigmes, D.; Fouassier, J. P.; Lalevee, J.; J. Polym. Sci., Part A: Polym. Chem. 2015, 53, 567.

2 Agboola, B.; Ozoenema, K. I.; Nyokong, T.; J. Mol. Catal. A: Chem. 2006, 248, 84.
-33 Goldstein, S.; Aschengrau, D.; Diamant, Y.; Rabani, J.; Environ. Sci. Technol. 2007, 41, 7486.,77 Hager, B.; Strauss, W. S. L.; Falk, H.; Photochem. Photobiol. 2009, 85, 1206.,1515 Fotinos, N.; Convert, M.; Piffaretti, J. C.; Gurny, R.; Lange, N.; Antimicrob. Agents Chemother. 2008, 52, 1366.,1616 Kussovski, V.; Mantareva, V.; Angelov, I.; Orozova, P.; Wohrle, D.; Schnurpfeil, G.; Borisova, E.; Avramov, L.; FEMS Microbiol. Lett. 2009, 294, 133.,2020 Tardivo, J. P.; Adami, F.; Correa, J. A.; Pinhal, M. A. S.; Baptista, M. S.; Photodiagn. Photodyn. Ther. 2014, 11, 342.,2525 Poutaraud, A.; Gregorio, F.; Tin, V. C. F.; Girardin, P.; Planta. Med. 2001; 67, 254.

26 Ricatto, L. G. O.; Conrado, L. A. L.; Turssi, C. P.; França, F. M. G.; Basting, R. T.; Amaral, F. L. B.; Eur. J. Dent. 2014, 28, 509.
-2727 Montanha, M. C.; Silva, L. L.; Pangoni, F. B B.; Cesar, G. B.; Gonçalves, R. S.; Caetano, W.; Hioka, N.; Tominaga, T. T.; Consolaro, M. E. L.; Diniz, A.; Kimura, E.; J. Photochem. Photobiol., B 2017, 170, 247. Neste caso, o crescente emprego de LEDs tem-se mostrado bastante viável devido ao avanço tecnológico e disponibilidade de sistemas com diodos montados sobre superfície (do inglês: "Surface Mounted Diodes" - SMD LEDs) com relativo baixo custo viabilizando a obtenção de fontes com diferentes potências e regiões espectrais de irradiação, favorecendo adaptações a sistemas que possuam elevado grau de sobreposição espectral LED/FS sem a necessidade do uso de filtros para eliminação de radiações indesejadas.1818 Xu, H.; Liu, C.; Mei, J.; Yao, C.; Wang, S.; Wang, J.; Li, Z.; Zhang, Z.; Int. J. Nanomed. 2012, 7, 5029.,2525 Poutaraud, A.; Gregorio, F.; Tin, V. C. F.; Girardin, P.; Planta. Med. 2001; 67, 254.,2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.,2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14.

Em relação ao estudo de processos fotoquímicos, os experimentos realizados inicialmente em escala laboratorial são essenciais para produzir informações relevantes que contribuam com a otimização do processo em questão em termos de irradiação do sistema, considerando a potência da fonte, o tempo de exposição à irradiação luminosa e a região espectral de irradiação.2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.

29 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14.
-3030 Bolton, J.; Mayor-Smith, I.; Linden, K. G.; Photochem. Photobiol. 2015, 91, 1252. Neste sentido, é relevante considerar os efeitos específicos causados após a absorção de luz efetiva pela amostra em função de diferentes variáveis envolvendo as propriedades fotônicas, tanto da fonte emissora quanto do sistema em questão, uma vez que somente os fótons que foram absorvidos pelo FS podem induzir processos fotoquímicos/fotofísicos desejáveis (lei de Grotthus-Draper).2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14.,3030 Bolton, J.; Mayor-Smith, I.; Linden, K. G.; Photochem. Photobiol. 2015, 91, 1252.

Apesar da importância da avaliação de luz efetivamente absorvida nos estudos envolvendo processos fotoquímicos, muitos trabalhos na literatura não consideram este aspecto, nos quais diversos tipos de fontes de luz com diferentes potências e perfis espectrais são empregados de forma qualitativa, por exemplo, considerando apenas a potência absoluta de emissão da fonte de irradiação associada a um possível recobrimento espectral entre FS e fonte de luz.11 Xiao, P.; Dumur, F.; Graff, B.; Zhang, J.; Morlet-Savary, F.; Gigmes, D.; Fouassier, J. P.; Lalevee, J.; J. Polym. Sci., Part A: Polym. Chem. 2015, 53, 567.,22 Agboola, B.; Ozoenema, K. I.; Nyokong, T.; J. Mol. Catal. A: Chem. 2006, 248, 84.,44 Kluson, P.; Drobek, M.; Kalaji, A.; Zarubova, S.; Krysa, J.; Rakusan, J.; J. Photochem. Photobiol., A 2008, 199, 267.,66 Kim, S. W.; Park, J. H.; Yang, S. D.; Hur, M. G.; Choi, C. W.; Yu, K. H.; Bull. Korean Chem. Soc. 2008, 29, 2023.,88 Lin-Fang, H.; Zeng-Hui, W.; Shi-Lin, C.; Chin. J. Nat. Med. 2014, 12, 81.,99 Gonçalves, R. S.; Rabello, B. R.; Cesar, G. B.; Pereira, P. C. S., Ribeiro, M. A. S.; Meurer, E. C.; Hioka, N.; Nakamura, C. V.; Bruschi, M. L. Caetano, W.; Org. Process Res. Dev. 2017, 21, 2025.,1212 Cizekova, L.; Grolmusova, A.; Ipothova, Z.; Barbierikova, Z.; Brezova, V.; Hunakova, L.; Imrich, J.; Janovec, L.; Dovinova, I.; Paulikova, H.; Bioorg. Med. Chem. 2004, 22, 4684.

13 Agrawal, N.; Ray, R. S.; Farooq, M.; Pant, A. B.; Hans, R. K.; Photochem. Photobiol. 2007, 83, 1226.

14 Li, W. T.; Tsao, H. W.; Chen, Y. Y.; Cheng, S. W.; Hsu, Y. C.; Photochem. Photobiol. Sci. 2007, 6, 1341.

15 Fotinos, N.; Convert, M.; Piffaretti, J. C.; Gurny, R.; Lange, N.; Antimicrob. Agents Chemother. 2008, 52, 1366.

16 Kussovski, V.; Mantareva, V.; Angelov, I.; Orozova, P.; Wohrle, D.; Schnurpfeil, G.; Borisova, E.; Avramov, L.; FEMS Microbiol. Lett. 2009, 294, 133.

17 Zhao, Y.; Xia, Q.; Yin, J. J.; Lin, G.; Fu, P. P.; Toxicol. Lett. 2011, 205, 302.
-1818 Xu, H.; Liu, C.; Mei, J.; Yao, C.; Wang, S.; Wang, J.; Li, Z.; Zhang, Z.; Int. J. Nanomed. 2012, 7, 5029.,2525 Poutaraud, A.; Gregorio, F.; Tin, V. C. F.; Girardin, P.; Planta. Med. 2001; 67, 254. Adicionalmente, destaca-se o processo de fotobranqueamento sofrido por FSs durante a fotorreação, que é um efeito bastante negligenciado na literatura e que pode alterar significativamente a absorção de luz pelo FS em função do tempo de irradiação.2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.,2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14.,3131 Hadjur, C.; Lange, N.; Rebstein, J.; Monnier, P.; Bergh, H.; Wagnières, G.; J. Photochem. Photobiol., B. 1998, 45, 170.

Estudos realizados sem um controle quantitativo sobre a luz absorvida são verificados principalmente quando se empregam fontes de luz policromáticas, os quais exigem um formalismo matemático específico e mais complexo em relação a sistemas que empregam fontes monocromáticas, como LASERs.2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.,2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14. Contrapondo este cenário, a literatura apresenta ampla discussão e diversas equações para determinação de luz absorvida pelo FS em solução, incluindo equações destinadas a sistemas que empregam fontes policromáticas,2222 Macdonald, I. J.; Dougherty, T. J.; J. Porphyrins Phthalocyanines 2001, 5, 105.,2626 Ricatto, L. G. O.; Conrado, L. A. L.; Turssi, C. P.; França, F. M. G.; Basting, R. T.; Amaral, F. L. B.; Eur. J. Dent. 2014, 28, 509.,2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.,2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14.,3232 Dougherty, T. J.; Gomer, C. J.; Weishaupt, K. R.; Cancer Res. 1976, 36, 2330.

33 Gandin, E.; Lion, Y.; J. Photochem. 1982, 20, 77.
-3434 Bonacin, J. A.; Engelmann, F. M.; Severino, D.; Toma, H. E.; Baptista, M. S.; J. Braz. Chem. Soc. 2009, 20, 31. utilizadas para determinação de diversas propriedades fotofísicas, como: rendimento quântico de fluorescência (ΦF),3535 Vilsinski, B. H.; Gerola, A. P.; Enumo, J. A.; Campanholi, K. S. S.; Pereira, P. C. S.; Braga, G.; Hioka, N.; Kimura, E.; Tessaro, A. L.; Caetano, W.; Photochem. Photobiol. 2015, 91, 518,3636 Pereira, P. C. S.; Costa, P. F. A.; Pellosi, D. S.; Calori, I. R.; Vilsinski, B. H.; Estevão, B. M.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Mol. Liq. 2017, 230, 674. rendimento quântico de fotobranqueamento (ΦFB),3131 Hadjur, C.; Lange, N.; Rebstein, J.; Monnier, P.; Bergh, H.; Wagnières, G.; J. Photochem. Photobiol., B. 1998, 45, 170. rendimento quântico de geração de oxigênio singlete 1O2Δ 1O2) ou de outras espécies reativas de oxigênio.33 Goldstein, S.; Aschengrau, D.; Diamant, Y.; Rabani, J.; Environ. Sci. Technol. 2007, 41, 7486.,2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.,2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14.,3131 Hadjur, C.; Lange, N.; Rebstein, J.; Monnier, P.; Bergh, H.; Wagnières, G.; J. Photochem. Photobiol., B. 1998, 45, 170.

Em trabalhos previamente publicados,2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.,2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14. foi apresentada uma equação para determinação de número de fótons absorvidos por FSs em solução (Nabs), visando o aprimoramento de metodologias químicas relacionadas à determinação de valores de ΦΔ 1O2 para diferentes FSs, empregando uma única fonte de irradiação de acordo com a classe de FS.2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.,2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14. Por sua vez, neste trabalho é apresentada uma equação mais apropriada referente à dose de luz efetivamente absorvida (Dabs; [J cm -2]) por uma molécula fotossensibilizadora, termo bastante empregado em estudos de sistemas biológicos,1212 Cizekova, L.; Grolmusova, A.; Ipothova, Z.; Barbierikova, Z.; Brezova, V.; Hunakova, L.; Imrich, J.; Janovec, L.; Dovinova, I.; Paulikova, H.; Bioorg. Med. Chem. 2004, 22, 4684.

13 Agrawal, N.; Ray, R. S.; Farooq, M.; Pant, A. B.; Hans, R. K.; Photochem. Photobiol. 2007, 83, 1226.

14 Li, W. T.; Tsao, H. W.; Chen, Y. Y.; Cheng, S. W.; Hsu, Y. C.; Photochem. Photobiol. Sci. 2007, 6, 1341.

15 Fotinos, N.; Convert, M.; Piffaretti, J. C.; Gurny, R.; Lange, N.; Antimicrob. Agents Chemother. 2008, 52, 1366.
-1616 Kussovski, V.; Mantareva, V.; Angelov, I.; Orozova, P.; Wohrle, D.; Schnurpfeil, G.; Borisova, E.; Avramov, L.; FEMS Microbiol. Lett. 2009, 294, 133. no sentido de fornecer valores reais de dose de luz absorvida para avaliações relativas de fotoatividade de compostos FSs envolvidos diretamente em processos fotoquímicos ou fotodinâmicos, sob influência de fotoestimulação proporcionada por diferentes fontes de LED policromáticas com distintas propriedades fotônicas, sem a necessidade de padrões específicos.

A equação Dabs proposta considera os fatores: potência da fonte de luz, tempo de exposição do FS ao fluxo de fótons, espectro de emissão (região de comprimento de onda) de irradiação da fonte, grau de recobrimento espectral FS/fonte de luz, e principalmente, o processo inerente de fotodegradação ou fotobranqueamento do FS, desta forma levando em conta os principais parâmetros referentes à dependência da absorção de luz pela molécula de interesse.

Neste trabalho, a equação Dabs proposta foi empregada no estudo da fotoatividade do AM para avaliar seu potencial de geração de 1O2 sob irradiação com diferentes fontes de luz a base de LEDs, com diferentes potências e comprimentos de onda de irradiação. Sua fotoatividade foi correlacionada com seus respectivos valores de Dabs para cada sistema fotorreacional, no sentido de indicar qual das fontes LED empregadas é mais eficiente para produção de 1O2, considerando todas as variáveis mencionadas. O AM foi estudado em meio etanólico e em concentração relativamente baixa (7.2 × 10-6 mol L-1), condições em que se encontra somente a espécie monomérica do FS e seu mecanismo de fotoatividade é somente por tipo II (geração de 1O2).2323 Junqueira, H. C.; Severino, D.; Dias, L. G.; Gugliotti, M. S.; Baptista, M. S.; Phys. Chem. Chem. Phys. 2002, 4, 2320. A geração de 1O2 foi monitorada indiretamente por espectrofotometria de absorção eletrônica através do consumo do substrato antioxidante 1,3-difenilisobenzofurano (DFBF), um supressor químico para 1O2.3232 Dougherty, T. J.; Gomer, C. J.; Weishaupt, K. R.; Cancer Res. 1976, 36, 2330.,3737 Gandin, E.; Lion, Y.; Vorst, A. V.; Photochem. Photobiol. 1983, 37, 271.,3838 Redmond, R. W.; Gamlin, J. N.; Photochem. Photobiol. 1999, 71, 391.

MATERIAIS E MÉTODOS

O fotossensibilizador azul de metileno/AM foi adquirido da B'Herzog e o substrato antioxidante 1,3-difenilisobenzofurano/DFBF foi adquirido da Sigma-Aldrich; etanol de grau analítico adquirido da Synth foi utilizado como solvente. Para irradiação luminosa do sistema (Esquema 1) foram utilizados quatro diferentes conjuntos de LEDs com propriedades fotônicas distintas, adquiridos da Cromatek: LED azul (84 mW cm-2; λmáx 473 nm), LED verde (30 mW cm-2; λmáx 519 nm), LED laranja (31 mW cm-2; λmáx 590nm) e LED vermelho (8 mW cm-2; λmáx 642nm).

Esquema 1
(A) Arranjo de LEDs; (B) Arranjo experimental (espectrofotômetro): cubeta adaptada com arranjo do sistema de irradiação a base de LEDS (A); (C) Representação esquemática de (B): vista frontal; (D) Representação esquemática de (B): vista lateral: arranjo de LEDs perpendicular ao feixe incidente (I0) do espectrofotômetro; (E) Representação esquemática de (B): vista superior

A reação foi conduzida com 3.00 mL de amostra contendo azul de metileno/AM (7.2 × 10-6 mol L-1) e 1,3-difenilisobenzofurano/DFBF (2.5 × 10-5 mol L-1) em cubeta de quartzo e irradiada por conjuntos de 3 LEDs (modelo 5 mm) adaptados nas laterais da cubeta e perpendicular à direção do feixe de um espectrofotômetro de absorção eletrônica UV-Vis (Varian, modelo Cary 50), conforme apresentado no Esquema 1. Os parâmetros dos LEDs (espectro de emissão e irradiância espectral; [W cm-2 nm-1]) foram obtidos por um radiômetro modelo USB 2000 (Ocean Optics). Os processos fotorreacionais foram realizados diretamente no porta-amostras do espectrofotômetro mantendo a irradiação constante na amostra por cada sistema de LEDs, sem a observação de interferência pela luz emitida pelos LEDs no monitoramento dos espectros de absorção eletrônica do AM e DFBF no sistema devido ao equipamento utilizar o modo de radiação em fase.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

A Figura 1 apresenta os espectros de absorção eletrônica para o AM (7.2 × 10-6 mol L-1) e DFBF (2.5 × 10-5 mol L-1), sobrepostos aos espectros de irradiância espectral (I0; [W cm-2 nm-1]) dos diferentes LEDs empregados no estudo, evidenciando as diferenças em suas propriedades fotônicas (espectro de emissão e irradiância). O sistema estudado é bastante conveniente devido à ausência de sobreposição do espectro de absorção eletrônica do substrato DFBF ao do fotossensibilizador AM, possibilitando o monitoramento do consumo do DFBF (λmáx 411 nm) sem interferências causadas por compartilhamento de fótons entre FS e substrato, o que também poderia influenciar no processo de fotoexcitação do AM. Outro fator importante é que o DFBF praticamente não apresenta sobreposição de seu espectro de absorção eletrônica nas regiões espectrais de irradiação dos LEDs, ressaltando que a sobreposição espectral não significativa DFBF/LED azul (<1% de absorção de fótons do LED pelo DFBF) não induziu sua fotodegradação direta na ausência de AM (resultados não mostrados). Os espectros de emissão dos LEDs vermelho (λmáx 642 nm) e laranja (λmáx 590 nm) apresentam um maior grau de sobreposição espectral com o espectro de absorção eletrônica do AM (regiões de máxima absorção eletrônica), já os LEDs verde (λmáx 519 nm) e azul (λmáx 473 nm) irradiam em regiões de baixa sobreposição espectral com o espectro absorção eletrônica do AM, a princípio gerando um baixo percentual de luz absorvida em comparação aos LEDs vermelho e laranja. Contudo, observações qualitativas referentes à potência ou ao recobrimento espectral LED/AM não indicam qual sistema de LEDs empregado neste caso promove maior dose de luz efetivamente absorvida pelo AM, sendo necessário determinar sua dose de luz efetivamente absorvida durante o processo (Dabs; [J cm-2]), por exemplo.

Figura 1
Espectros de absorção eletrônica para o AM (7.2 × 10-6 mol L-1) e DFBF (2.5 × 10-5 mol L-1) em etanol a 25 ºC, sobrepostos aos espectros de irradiância absoluta (I0; [W cm-2 nm-1]) dos diferentes LEDs: LED azul (84 mW cm-2; λmáx 473 nm), LED verde (30 mW cm-2; λmáx 519 nm), LED laranja (31 mW cm-2; λmáx 590 nm) e LED vermelho (8 mW cm-2; λmáx 642 nm)

Inicialmente, a equação (1) foi utilizada para determinação dos valores de irradiância emitida (Iem; [W cm-2]) para cada conjunto de LEDs, fornecendo seu respectivo valor de área espectral:33 Goldstein, S.; Aschengrau, D.; Diamant, Y.; Rabani, J.; Environ. Sci. Technol. 2007, 41, 7486.,2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.

(1) I em = λ i λ f I 0 λ d λ

em que λi e λf são respectivamente os comprimentos de onda inicial e final do espectro de emissão do LED (nm), e I0 é a irradiância espectral do LED (W cm-2 nm-1).

Através dos espectros de absorção eletrônica (Abs), a quantidade de luz absorvida pelo FS em solução é determinada através de sua fração de luz absorvida (Xabs; equação (2)):2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.,3434 Bonacin, J. A.; Engelmann, F. M.; Severino, D.; Toma, H. E.; Baptista, M. S.; J. Braz. Chem. Soc. 2009, 20, 31.,3939 Krishna, C. M.; Uppuluri S.; Riesz, P.; Zigler, J. S.; Balasubramanian, D.; Photochem. Photobiol. 1991, 54, 51.

(2) X abs = 1 10 Abs

Por sua vez, a irradiância absorvida pelo FS (Iabs; [W cm-2]) é dada pelo produto da sobreposição espectral entre Iem (equação (1)) e Xabs (equação (2)) para cada comprimento de onda, fornecendo a equação (3):33 Goldstein, S.; Aschengrau, D.; Diamant, Y.; Rabani, J.; Environ. Sci. Technol. 2007, 41, 7486.,2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.

(3) I abs = λ i λ f I 0 λ X abs λ d λ

em que λi e λf são respectivamente os comprimentos de onda inicial e final do espectro onde ocorre sobreposição espectral LED/FS.

Como exemplo, a Figura 2 apresenta espectros referentes aos fatores Xabs, Iem e Iabs para um sistema contendo AM (7.2 × 10-6 mol L-1) em solução etanólica sob irradiação com o LED vermelho, mostrando os espectros de Iem do LED (8 mW cm-2) e Iabs pelo AM (3.1 mW cm-2).

Figura 2
Espectro de Xabs para o AM (7.2 × 10-6 mol L-1) em etanol sobreposto aos espectros de irradiância espectral emitida pelo LED (Iem = 8mW cm-2) e absorvida pelo AM (Iabs = 3.1 mW cm-2)

De posse dos valores de Iabs para um sistema, os valores de dose de luz absorvida (Dabs; [W s cm-2 ou J cm-2]) para FSs fotoestáveis podem ser determinados através da equação (4):3232 Dougherty, T. J.; Gomer, C. J.; Weishaupt, K. R.; Cancer Res. 1976, 36, 2330.

(4) D abs = t λ i λ f I 0 λ X abs λ d λ

em que λi e λf são respectivamente os comprimentos de onda inicial e final do espectro onde ocorre sobreposição espectral LED/FS, e t é o tempo de irradiação da amostra.

A equação (4) é coerente apenas para sistemas fotoestáveis, nos quais não há fotodegradação significativa do FS durante a irradiação da amostra. Contudo, é comum verificar efeitos fotodegradativos de FSs de diferentes classes, podendo resultar numa considerável redução da taxa efetiva de fótons absorvidos, que é dependente da potência da fonte, recobrimento espectral LED/FS, tempo de irradiação e fotobranqueamento do FS.99 Gonçalves, R. S.; Rabello, B. R.; Cesar, G. B.; Pereira, P. C. S., Ribeiro, M. A. S.; Meurer, E. C.; Hioka, N.; Nakamura, C. V.; Bruschi, M. L. Caetano, W.; Org. Process Res. Dev. 2017, 21, 2025.,2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.,2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14. Desta forma, é importante considerar a variação da taxa de fótons efetivamente absorvidos durante o processo, que pode ser corrigido através da substituição do termo t pelo termo ekpt integrado em função do tempo, conforme mostra a equação (5):2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.,2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14.,3131 Hadjur, C.; Lange, N.; Rebstein, J.; Monnier, P.; Bergh, H.; Wagnières, G.; J. Photochem. Photobiol., B. 1998, 45, 170.

(5) D abs = 0 t λ i λ f I 0 λ X abs λ e k p t t d λ d t

Em que kp é a constante cinética de primeira ordem referente ao fotobranqueamento do FS.2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.,2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14. A integral em t' corrige o fotobranqueamento considerando a variação da fração de moléculas fotodegradadas em função do tempo.

A equação (5) é coerente para sistemas na ausência e na presença de fotobranqueamento, uma vez que não ocorrendo o fotobranqueamento o valor de kp tende a 0, logo o termo ekpt se iguala a 1 tornando a equação (5) equivalente à equação (4).

O comportamento temporal dos espectros de absorção eletrônica para esta fotorreação foi exemplificado com o sistema empregando o LED vermelho (Figura 3-A), em que o consumo do substrato DFBF ocorreu durante a fotoexcitação do AM, mostrando um consumo do DFBF relativamente rápido (~20 min) em relação ao processo concomitante de fotodegradação do AM. A Figura 3-B apresenta o perfil de degradação do DFBF para obtenção de seu respectivo valor de constante cinética de fotorreação (kD = 0.63 min-1) ajustado por equação exponencial de primeira ordem,2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14. sendo consumido majoritariamente pelo 1O2 formado durante a irradiação da amostra.2424 Severino, D.; Junqueira, H C.; Gugliotti, M.; Gabrielli, D. S.; Baptista, M. S.; Photochem. Photobiol. 2003, 77, 459. A Figura 3-C apresenta os perfis cinéticos de consumo para o DFBF empregando os quatro diferentes conjuntos de LEDs, nos quais as velocidades de consumo estão relacionadas majoritariamente à taxa de produção de 1O2 em solução, que por sua vez depende da quantidade efetiva de fótons absorvidos pelo AM.

Figura 3
(A) Comportamento espectral para a fotorreação contendo AM (7.2 × 10-6 mol L-1) e DFBF (2.5 × 10-5 mol L-1) em etanol a 25 ºC, associado ao espectro normalizado do LED vermelho (8 mW cm-2; λmáx 642 nm) utilizado para irradiação da amostra durante 20 min (a linha mais grossa representa o espectro inicial); (B) Respectivo ajuste do perfil cinético de degradação de primeira ordem do DFBF em seu λmáx 411 nm para obtenção de kD (0.63 min-1); (C) Perfil cinético de consumo (fotodegradação) do DFBF empregando os diferentes conjuntos de LEDs

A Tabela 1 apresenta os valores de Iem, Iabs, Dabs, kp e kD empregando os diferentes LEDs para irradiação das amostras. A ordem apresentada pelos valores de Iem (LED vermelho < LED laranja ≈ LED verde < LED azul), que está relacionada exclusivamente à potência de luz emitida por cada LED, a qual se mostrou diferente da ordem apresentada pelos valores estimados experimentalmente de Dabs (LED verde ≈ LED azul < LED vermelho < LED laranja), evidenciando que, além da potência de emissão da fonte de luz, devem ser considerados outros fatores como a sobreposição espectral LED/AM, o tempo de irradiação, além de eventuais processos de fotobranqueamento do FS.

Tabela 1
Valores de Iem dos diferentes LEDs; Iabs e Dabs pelo AM, e os respectivos valores de kp e kD estimados para amostras contendo AM (7.2 × 10-6mol L-1) e DFBF (2.5 × 10-5mol L-1), irradiados pelos diferentes LEDs, em etanol a 25ºC.

Por exemplo, para o intervalo de tempo calculado de 60 s, o resultado calculado de Dabs para o LED vermelho, de menor valor de Iem (8 mW cm-2), foi superior ao observado pelo LED azul, que apresentou o maior valor de Iem (84 mW cm-2). Por sua vez, o LED laranja de valor intermediário de Iem (31 mW cm-2, similar ao LED verde), apresentou o maior valor de Dabs devido a sua considerável potência de emissão e elevado grau de recobrimento espectral AM/LED laranja, embora apresentasse o dobro do grau de fotobranqueamento comparado aos outros LEDs. Neste caso o LED verde, com metade do grau de fotobranqueamento em relação ao LED laranja e similar aos outros, apresentou o menor valor de Dabs. Adicionalmente, a Figura 4 mostra que, neste estudo apresentado, os valores de kD seguiram a mesma ordem dos valores de Dabs (LED verde ≈ LED azul < LED vermelho < LED laranja), indicando que a taxa de geração de 1O2 foi mais elevada para os sistemas que apresentaram maior dose de luz efetivamente absorvida pelo AM durante um mesmo intervalo de tempo, sendo que os valores de Dabs refletem a relevância dos fatores experimentais considerados na equação 5 para a eficiência máxima do fotoprocesso.

Figura 4
Gráfico de kD vs Dabs utilizando os diferentes LEDs

Simultaneamente ao consumo do substrato, foram observados processos fotodegradativos do AM durante a irradiação das amostras, e seus respectivos valores de kp (Tabela 1) foram extraídos de ajustes das curvas de fotobranqueamento através de equação cinética de primeira ordem (dados não apresentados). Os valores de kp foram utilizados para correção dos resultados de Dabs através do termo ekpt (equação (5)). Durante o intervalo de 60 s de irradiação, observaram-se taxas de fotobranqueamento para o AM de aproximadamente 3% para o LED azul, 2% para o LED verde, 5% para o LED laranja e 3% para o LED vermelho, chegando até 28% de fotobranqueamento após 20 min de irradiação com o LED laranja, por exemplo. Neste caso, as taxas de fotobranqueamento (kp) mostraram-se dependentes da quantidade de luz absorvida pelo AM (Dabs), sendo que os valores de kp foram mais elevados para os sistemas que apresentaram os maiores valores de Dabs. Por exemplo, o sistema irradiado pelo LED laranja, que apresenta o maior valor de Dabs (0.32 J cm-2), possui o valor de kp (0.017 min-1) mais elevado dentre os sistemas avaliados. Apesar das variações entre as taxas de fotobranqueamento empregando os diferentes LEDs, este efeito foi pouco significativo sobre os resultados de Dabs, uma vez que o tempo calculado foi relativamente baixo (60 s) já que as velocidades do consumo do DFBF foram bastante elevadas em relação às velocidades de fotobranqueamento do AM (valores de kD em torno de 30-80 vezes maiores que kp). Contudo, muitos sistemas apresentados na literatura mostram velocidades significativas de processos fotodegradativos de FSs que ocorrem concomitantes ao consumo de sensores substratos, em que se utilizam diferentes tipos de substratos e FSs de diferentes classes (com velocidades de fotobranqueamento e propriedades espectroscópicas distintas), sendo necessário corrigir estes efeitos para maior aproximação aos valores reais de luz efetivamente absorvida pela amostra.99 Gonçalves, R. S.; Rabello, B. R.; Cesar, G. B.; Pereira, P. C. S., Ribeiro, M. A. S.; Meurer, E. C.; Hioka, N.; Nakamura, C. V.; Bruschi, M. L. Caetano, W.; Org. Process Res. Dev. 2017, 21, 2025.,2828 Rabello, B. R.; Gerola, A. P.; Pellosi, D. S.; Tessaro, A. L.; Aparicio, J. L.; Caetano, W.; Hioka, N.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 238, 53.,2929 Gerola, A. P.; Semensato, J.; Pellosi, D. S.; Batistela, V. R.; Rabello, B. R.; Hioka, N.; Caetano, W.; J. Photochem. Photobiol., A 2012, 232, 14.

CONCLUSÃO

O presente estudo propõe uma equação apropriada referente à dose efetiva de luz absorvida (Dabs) por uma molécula fotossensibilizadora envolvida diretamente em processos fotoquímicos e fotodinâmicos, sob influência de irradiação luminosa proporcionada por diferentes fontes policromáticas (LEDs) com propriedades fotônicas distintas. Neste estudo, a dependência de fatores experimentais presentes no sistema fotodinâmico compreendendo o FS azul de metileno, através de sua capacidade de fotossensibilização do substrato DFBF por oxigênio singlete sobre ação da luz, foi analisada calculando-se Dabs pelas diferentes fontes. Para o intervalo de tempo calculado de 60 s, o valor de Dabs para o LED vermelho, de menor valor de irradiância (Iem = 8 mW cm-2), foi superior ao observado pelo LED azul, que apresentou o maior valor de Iem (84 mW cm-2). Por sua vez o LED laranja de valor intermediário de Iem (31 mW cm-2, e similar ao LED verde), apresentou o maior valor de Dabs devido a sua considerável potência de emissão e elevado grau de recobrimento espectral AM/LED laranja, embora apresentasse o dobro do grau de fotobranqueamento comparado aos outros LEDs. Neste caso o LED verde, com metade do grau de fotobranqueamento em relação ao LED laranja e similar aos demais, apresentou o menor valor de Dabs. Assim a ordem LED verde ≈ LED azul < LED vermelho < LED laranja evidenciada pelos valores de Dabs reflete a relevância dos fatores experimentais considerados na equação 5 para a eficiência máxima do fotoprocesso, fornecendo assim maior aproximação dos valores reais de Dabs e indicando a fonte LED mais eficiente.

Demonstramos através deste estudo que os fatores considerados na equação 5 influenciam na eficiência de processos fotoquímicos, podendo reduzir esta eficiência por meio da escolha de condições experimentais menos apropriadas associadas à menor precisão inferida de medições de fontes fotônicas, o que interessantemente tem sido verificado em estudos em diferentes ramos. Portanto, o fator de dose efetivamente absorvida (Dabs) aqui proposto visa fornecer uma avaliação quantitativa da dose real de luz absorvida pelos sistemas fotoquímicos/fotodinâmicos.

AGRADECIMENTOS

Os autores agradecem ao CNPq, CAPES, Fundação Araucária e SETI/UGF - Paraná pelo suporte e apoio financeiro.

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Datas de Publicação

  • Publicação nesta coleção
    Ago 2018

Histórico

  • Recebido
    02 Dez 2017
  • Aceito
    07 Maio 2018
  • Publicado
    30 Maio 2018
Sociedade Brasileira de Química Instituto de Química, Universidade Estadual de Campinas (Unicamp), CP6154, 13083-0970 - Campinas - SP - Brazil
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