Flavonóide e triterpenos de Stigmaphyllom paralias

Flavonoid and triterpenes from Stigmaphyllom paralias

Resumo

Stigmaphyllom paralias is a herb belonging to the family Malpighiaceae that occurs in sand soil of brazilian " restinga". This is the first report regarding phytochemical study with this species. The hexane extract of the aerial parts of plant afforded the triterpenes friedelin, lupenone, 3-oxo-alpha-amirin and 3-oxo-beta-amirin, the mixture of alpha-amirinyl palmitate and stearate, lupeol and 3,4-seco-friedelan-3-oic acid. The AcOEt extract yielded the flavonoid luteolin-7-rutinoside. All compounds were characterized by analysis of spectrometric data and the fatty acids esterified with alpha-amirine were identified by GC/MS of methyl derivatives of transesterified products . This is the first natural occurence of 3,4-seco-friedelan-3-oic acid and the 13C NMR spectral data were inequivocally assigned by two-dimensional techniques. This work also permitted to correct the 13C NMR resonances attributed to methyl groups C-26 and C-27 of fridelin.

Stigmaphyllom paralias; 3,4-seco-friedelan-3-oic acid; luteolin-7-ruthenoside

Stigmaphyllom paralias; 3,4-seco-friedelan-3-oic acid; luteolin-7-ruthenoside

ARTIGO

Flavonóide e triterpenos de Stigmaphyllom paralias

Flavonoid and triterpenes from Stigmaphyllom paralias

Jorge M. DavidI, ^*; Fátima A. Santos^I; Maria Lenise da S. Guedes^II; Juceni P. David^III;

^IInstituto de Química, Universidade Federal da Bahia, 40170-290 Salvador - BA

^IIInstituto de Biologia, Universidade Federal da Bahia, 40170-290 Salvador - BA

^IIIFaculdade de Farmácia, Universidade Federal da Bahia, 40170-290 Salvador - BA

ABSTRACT

Stigmaphyllom paralias is a herb belonging to the family Malpighiaceae that occurs in sand soil of brazilian " restinga". This is the first report regarding phytochemical study with this species. The hexane extract of the aerial parts of plant afforded the triterpenes friedelin, lupenone, 3-oxo-a-amirin and 3-oxo-b-amirin, the mixture of a-amirinyl palmitate and stearate, lupeol and 3,4-seco-friedelan-3-oic acid. The AcOEt extract yielded the flavonoid luteolin-7-rutinoside. All compounds were characterized by analysis of spectrometric data and the fatty acids esterified with a-amirine were identified by GC/MS of methyl derivatives of transesterified products . This is the first natural occurence of 3,4-seco-friedelan-3-oic acid and the ¹³C NMR spectral data were inequivocally assigned by two-dimensional techniques. This work also permitted to correct the ¹³C NMR resonances attributed to methyl groups C-26 and C-27 of fridelin.

Keywords:Stigmaphyllom paralias; 3,4-seco-friedelan-3-oic acid; luteolin-7-ruthenoside.

INTRODUÇÃO

A família Malpighiaceae é formada por aproximadamente 800 espécies especialmente americanas distribuídas em 60 gêneros, de ocorrência em regiões tropicais¹. Os representantes mais importantes desta família são os cipós originários da Amazônia, do gênero Banisteropsis, que são empregados pelos indígenas como preparados alucinógenos em rituais. Os alcalóides do tipo b-carbolíneos são as substâncias responsáveis pela atividade alucinógena apresentada².

No nordeste brasileiro ocorrem diversas espécies dos gêneros Byrsonima, Camarea, Galphimia, Stigmaphyllom e Peixotoa. Apesar desse grande número de espécies vegetais, pouco é conhecido acerca da constituição química da família. Os poucos trabalhos na literatura reportam a presença de triterpenos em B. verbascifolia e B. microphylla³ e, flavonóides e esteróides em B. variabilis e S. tometosum⁴. Além desta última espécie, outros estudos de abordagem fitoquímica do gênero Stigmaphyllom são restritos a espécies que ocorrem nas Guianas. Das raízes e folhas de S. sagitattum e raízes de S. convolvulifolium foram isolados iridóides⁵. A presença de iridóides na família Malpighiaceae é uma informação relevante pois, segundo a classificação de Dahlgreen, esta família da ordem Polygalales encontra-se distante das ordens que produzem esta classe de metabólito. No Brasil a maior parte das espécies deste gênero são conhecidas por serem utilizadas como alimentos, como por exemplo S. fulgens (cajuçára), além do grupo de espécies do gênero que são conhecidas como cipó guassú¹. Deste modo, os estudos fitoquímicos com plantas desta família são justificados. Neste trabalho está descrito o isolamento das substâncias presentes nos extratos hexânico e acetato de etila das partes aéreas de S. paralias A. Juss., um arbusto normalmente baixo, de ocorrência comum nas restingas do litoral e dos tabuleiros da Bahia.

PARTE EXPERIMENTAL

Os espectros no UV foram registrados em espectrofotômetro da Varian mod. DS500. Os espectros no Infravermelho foram registrados no espectrômetro Jasco mod. Valor III, enquanto que os espectros de RMN foram obtidos em espectrômetro Gemini 300 da Varian, sendo que o referencial interno utilizado foram os picos dos solventes deuterados em relação ao sinal do TMS. Os espectros HMBC e HMQC foram registrados em equipamento da GE Omega 500 MHz. Os espectros de massas foram obtidos por inserção direta em equipamento da Finnigan mod. MAT 90 e em CG acoplado a detetor de massas da Varian mod. Saturn II para análise dos ésteres metílicos.

As partes aéreas de espécimens de S. paralias foram coletadas nas dunas da restinga do Parque Metropolitano do Abaeté, Salvador (BA). Um exemplar encontra-se catalogado no Herbário Alexandre Leal Costa do Instituto de Biologia da UFBA sob número 54296.

Após secagem e trituração, 215 g da planta foram submetidas à maceração com metanol. O extrato metanólico (17 g) foi particionado entre hexano:MeOH, CHCl₃/MeOH:H₂O e AcOEt/H₂O fornecendo as fases hexânica (1,8 g), a fase CHCl₃ (3,2 g) e AcOEt (10,5 g), respectivamente.

O extrato hexânico foi submetido à CC sob sílica gel, eluída com misturas de hexano:AcOEt com gradiente crescente de polaridade. Foram obtidas 45 frações de 50 ml cada e, a análise das frações obtidas por CCD usando reagente de Lieberman-Buchard permitiu o reagrupamento daquelas cuja composição era semelhante. A fração eluída com hex:AcOEt (95:5) foi submetida a nova CC sob sílica gel eluída com hexano:AcOEt (95:5). Foram recolhidas 40 frações de 13 ml cada e desta maneira isolados friedelina (1, 43 mg), 98 mg da mistura dos triterpenos lupenona, a- e b-amirinona, além da mistura de palmitato e estearato de a-amirina (2a + 2b, 21 mg). Da fração eluída com hex:AcOEt (9:1) foi obtido o lupeol (24 mg). As frações eluídas com hex:AcOEt (8:2) foram agrupadas com base em CCD e submetidas à permeação com Sephadex LH-20 utilizando-se uma mistura de MeOH: CH₂Cl₂ (1:1). Este procedimento permitiu o isolamento do ácido 3,4-seco-friedelan-3-óico (3, 22 mg).

O extrato AcOEt foi submetido à CC sob sílica gel 60 e eluído com misturas de CHCl₃:MeOH nas proporções 95:5, 9:1 e 4:1, sendo coletadas frações de 50 ml cada. As frações eluídas com a mistura de CHCl₃:MeOH (4:1) foram submetidas à permeação em Sephadex LH-20 e eluídas com CHCl₃:MeOH (3:7). Desta maneira obteve-se 53,0 mg da luteolina-7-rutenosídeo (4).

Luteolina-7-rutenosídeo (4)

Sólido amorfo. PF 250 ^oC (decp.). UV: Tabela 2. Dados de RMN de ¹H [300 MHz, DMSO, d (ppm), J (Hz)]: 6,61 (s, H-3), 6,04 (d, 1,3 Hz, H-6), 6,38 (d, 1,3 Hz, H-8), 6,38 (d, 2,0 Hz, H-2'), 6,89 (dd, 8,5 e 2,0 Hz, H-5'), 7,47 (d, 8,5 Hz, H-6'). RMN de ¹³C [75 MHz, DMSO, d (ppm)]: 167,37 (C-2), 102,90 (C-3), 181,66 (C-4), 161,58 (C-5), 99,43 (C-6), 163,69 (C-7), 95,00 (C-8), 157,88 (C-9), 103,01 (C-10), 120,90 (C-1'), 114, 85 (C-2'), 146,01 (C-3'), 153,02 (C-4'), 117,25 (C-5'), 122,08 (C-6'), valores para o grupo diglicosídeo vide Tabela 1.

Ácido 3,4-seco-friedelan-3-óico (3)

Cristais brancos. PF = 216-218 ^oC. EMIC (CH₄) m/z (int.): 445 [M^+•+H, C₃₀H₅₂O₂] (21), 443 (40), 442 (35), 441 (81), 440 (42), 427 (100), 409 (39), 407 (22), 399 (19), 219 (17), 205 (25), 159 (22), 143 (31), 129 (49), 117 (58), 115 (52). IV (KBr) cm^-1: 3200, 2929, 2868, 1705, 11465, 1386, 1284, 1216, 919, 756. RMN de ¹H (Tabela 3), RMN de ¹³C (Tabela 4).

3b-Estearato- e palmitato de ursen-12-enila (2)

Óleo. RMN de ¹³C [75 MHz, CDCl₃, d (ppm)]: 173,39 (CO₂R), 139,52 (C-13), 124,25 (C-12), 80,48 (C-3), 59,10 (C-18), 55,21 (C-5), 47,89 (C-9), 42,87 (C-22), 42,75 (C-14), 40,85 (C-8), 38,32 (C-1), 38,01 (C-4), 39,60 (C-19), 39,57 (C-20), 37,01 (C-10), 34,10 (C-17), 31,78 (C-7), 31,43 (C-21), 27,97 (C-15), 28,87 (C-28), 28,60 (C-23), 26,53 (C-16), 23,64 (C-11), 23,54 (C-27), 22,13 (C-2), 21,20 (C-30), 18,11 (C-6), 17,87 (C-29), 16,41 (C-26), 15,87 (C-25), 14,40 (C-24), 13,90 (CH₃[CH₂]_n).

Reação de transesterificação

Foram adicionados 20 ml da solução de NaOMe/MeOH (0,5 M) a 10 mg da mistura 2a + 2b. A solução foi mantida sob refluxo durante 2 h, então foi vertido 20 ml de água ao sistema reacional e extraído por duas vezes consecutivas com 40 ml de CH₂Cl₂. A fase diclorometânica foi concentrada obtendo-se a mistura dos ésteres graxos (1,5 mg). EMIE (70 eV): 298 (M^+•, C₁₉H₃₈O₂, 17%), 270 (M^+•, C₁₇H₃₄O₂, 15%).

RESULTADOS E DISCUSSÃO

O flavonóide foi identificado como sendo a luteolina-7-rutenosídeo (4) através da análise dos dados de RMN e pelo deslocamento provocado nas bandas do espectro no ultravioleta, após adição de reagentes de deslocamento. O padrão de substituição do anel A e a atribuição dos deslocamentos químicos foram obtidos a partir da análise dos espectros de RMN de ¹H e do HOMOCOSY que permitiram identificar a aglicona como sendo a luteonina. A comparação dos dados de RMN de ¹³C desta substância com os descritos na literatura⁶ corroboraram a identificação da luteolina-7-rutenosídeo. A confirmação da identificação do diglicosídeo rutinosídeo [raminose(1®6)glicose] foi efetuada através da análise do deslocamento químico do C-6" no espectro de RMN de ¹³C. No rutenosídeo o sinal do C-6" da glicose é registrado em campo mais baixo (~ 6 ppm)⁷ em relação ao mesmo carbono do monoglicosídeo (Tabela 1). A localização da unidade do açúcar no C-7 foi obtida pela análise dos deslocamentos batocrômicos observados nos espectros no UV. O deslocamento observado após adição de AlCl₃ e, posteriormente, HCl demonstraram claramente que as hidroxilas HO-5, HO-4' e HO-3' estavam livres (Tabela 2).

A natureza triterpênica dos compostos isolados do extrato hexânico foi evidenciada pela coloração rósea obtida na CCD destes, após revelação utilizando-se o reagente de Lieberman-Buchard. A friedelina e o lupeol foram identificados através da comparação direta dos dados de RMN com dados da literatura⁸. A identificação da mistura dos triterpenos lupenona, a- e b-amirinona foi efetuada baseada na metodologia descrita para análise de triterpenos em mistura por RMN⁹ e os dados de RMN de ¹³C são semelhantes aqueles descritos na literatura⁸.

O espectro de RMN de ¹³C da mistura 2a + 2b apresentou sinais característicos de triterpenos com esqueleto olean-12-eno⁸. No entanto, apresentou sinais de carbonos carboxílicos de ésteres (d 173,39) e outros, que evidenciaram efeito de proteção para o sinal do C-2 (Dd 5,7 ppm) e de desproteção (Dd 2,2 ppm) para o C-3, com relação aos respectivos carbonos da a-amirina. Estes dados foram indicativos de que estes compostos encontravam-se esterificados com ácidos graxos pelo grupo OH do C-3. A identificação dos ácidos graxos esterificados com a a-amirina foi efetuada via CG/EM a partir dos ésteres metílicos graxos, obtidos da reação de transesterificação da mistura de triterpenos com MeONa/MeOH. O cromatograma de íons totais dos ésteres metílicos formados mostrou dois picos em diferentes tempos de retenção e, cada um destes originou um espectro de massas cujos íons moleculares (m/z 298 e 270) e fragmentos eram correspondentes ao estearato de metila e palmitato de metila, respectivamente. Portanto, a análise conjunta dos dados permitiu propor como contituintes da fração a mistura do estearato e palmitato de a-amirina. Triterpenos esterificados com os ácidos graxos ainda não haviam sido descritos no gênero, embora já tenham sido descritos na família³. Até recentemente, triterpenos simples como as amirinas esterificadas com ácidos graxos ainda eram de distribuição relativamente restrita. Atualmente, o registro da ocorrência desse tipo de substância tem-se mostrado comum, principalmente nas folhas de diversas espécies do gênero Erythroxylum¹⁰ (Erythroxylaceae).

A substância 3 foi identificada através da análise conjunta dos dados espectrométricos obtidos. O sinal largo entre 3300-2700 cm^-1 e a banda em 1705 cm^-1 no espectro no infravermelho indicaram a presença de grupo ácido carboxílico. O íon molecular m/z 444 observado no EM aliado à presença de 30 sinais de carbonos observados no espectro de RMN de ¹³C permitiram, juntamente com as informações obtidas pelos experimentos DEPT (135^o e 90^o), inferir a fórmula molecular de 3 como sendo C₃₀H₅₂O₂. A partir da análise do espectro de RMN de ¹H desta substância ficou evidenciada a presença de grupo etila devido ao tripleto observado em d 0,79. Ainda pelos espectros de HMQC e HMBC este último sinal mostrava correlação com o carbono metílico em d 7,51 (C-23) e com C-5 (d 38,97), respectivamente (Tabela 3). Estes dados sugeriram a presença do anel A aberto neste triterpeno. Esta sugestão estava de acordo com o índice de deficiência de hidrogênio (IDH=5) obtido a partir da FM de 3. Deste modo, a presença de sinais para 7 outros grupos metílicos (singletos) observados no espectro de RMN de ¹H, bem como a semelhança da maioria dos dados de RMN de ¹³C desta substância com a friedelina, permitiram identificar 3 como sendo ácido 3,4-seco-friedelan-3-óico, provável produto da oxidação no C3-C-4 da friedelina. A análise dos dados espectrais de RMN de ¹³C do ácido 3,4-seco-friedelan-3-óico (Tabela 4) permitiu reatribuir os valores das metilas C-26 e C-27 da friedelina⁸ uma vez que, pelo espectro HMBC do ácido, foram observadas correlações entre H-26 e os C-12, C-13 e C-18, enquanto que os hidrogênios metílicos do C-27 apresentavam correlações com C-8, C-14, C-13 e C-15 (Tabela 3, Figura 1). Destaca-se que este ácido foi primeiramente obtido como um dos produtos da irradiação no ultravioleta da friedelina¹¹. No entanto, este ácido ainda não havia sido isolado de fonte natural, assim como nem todos os seus dados espectrométricos haviam sido registrados.

AGRADECIMENTOS

Ao CNPq pelo apoio financeiro e bolsas de pesquisa. Ao Prof. G. A. Cordell da Universidade de Illinois em Chicago pelos espectros de massas e RMN bidimensionais.

REFERÊNCIAS

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Recebido em 24/6/02

Aceito em 13/12/02

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Datas de Publicação

• Publicação nesta coleção
  04 Ago 2003
• Data do Fascículo
  Ago 2003