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Filtrados de fungos sapróbios do semiárido Nordestino no controle de Meloidogyne javanica

Filtrates of saprobic fungi from the Northeastern semi-arid region on the control of Meloidogyne javanica

RESUMO

A busca por métodos de controle alternativo de meloidoginoses é uma realidade para vários pesquisadores. Desta forma, o objetivo deste trabalho foi observar se filtrados de culturas de fungos sapróbios do semiárido nordestino controlam Meloidogyne javanica em plantas de tomate. Os filtrados de cultura de 10 fungos sapróbios, água (testemunha), batata e dextrose, Pochonia chlamydosporia (tratamento biológico padrão) e químico foram utilizados nos seguintes experimentos: eclosão, mobilidade, mortalidade de J2 e ensaios em casa de vegetação. Todos os filtrados estudados diminuíram a eclosão do nematoides e causaram a mortalidade de J2. Nos ensaios em casa de vegetação, verificou que o filtrado de cultura do fungo Curvularia inaequalis diminuiu o número de ovos e o número de galhas por sistema radicular sem influenciar no desenvolvimento do tomateiro.

Palavras-chave
controle alternativo; nematoide das galhas; meloidogynose

ABSTRACT

The search for alternative control methods against root-knot nematode disease is a reality for several researchers. Thus, the objective of the current study was to observe if filtrates from cultures of saprobic fungi from the Northeastern semiarid region, Brazil, can control Meloidogyne javanica in tomato plants. The filtrates from the culture of 10 saprophytic fungi, water (control), potato and dextrose, Pochonia chlamydosporia (standard biological treatment) and chemical treatment were used in the following experiments: hatching, mobility, J2 mortality and greenhouse trials. All studied filtrates decreased nematode hatching and caused J2 mortality. In the greenhouse experiments, the filtrate from the culture of the fungus Curvularia inaequalis decreased the number of eggs and the number of galls per root system without influencing the development of the tomato plant.

Keywords
alternative control; root-knot nematode; Meloidogyne

Os fitonematoides causam prejuízos em diversas culturas em todo o mundo, causando perdas nas produções agrícolas. Estes são considerados parasitas obrigatórios, pois dependem do tecido de plantas para seu crescimento, desenvolvimento e reprodução. São importantes patógenos primários causadores de doenças radiculares, podendo deixar a planta pré-disposta a outras infecções, se movem aleatoriamente no solo, podendo migrar para a região rizosférica, para dentro das raízes, ou em direção à parte aérea (1414 Lopes, E. A.; Ferraz, S . Importância dos fitonematoides na agricultura. In: OLIVEIRA, C. M. G .; SANTOS, M. A. ; CASTRO, L. H. S. (Org.). Diagnose defitonematoides. Campinas: Millennium. v. 1, p. 14, 2016, 1616 Rocha, FS; Muniz, MFS; Campos, VP. Coloração de fitonematoides com corantes usados naindústria alimentícia brasileira. Nematologia Brasileira, Piracicaba, v.29, n.2, p.293-297. 2005.).

O controle desses nematoides pode ser realizado pela utilização de nematicidas, porém, o uso desses produtos é restrito em vários países por apresentarem alta toxicidade e serem persistentes no ambiente (2020 Talavera, M.; Sayadi, S.; Chirosa-Ríos, M.; Salmerón, T.; Flor-Peregrín, E.; Verdejo-Lucas, S. Perception of the impact of root -knot nematode induced diseases in horticultural protected crops of south -eastern Spain. Nematology, v.14, p. 517–527, 2012., 1010 Elkelany, U. S.; El-Mougy, N. S .; Abdel-Kader, M. M. Management of root-knot nematode Meloidogyne incognita of eggplant using some growth-promoting rhizobacteria and chitosanunder greenhouse conditions. Egyptian Journal of Biological Pest Control, v . 30, p. 1-7, 2020.).

Desta forma, pesquisadores na tentativa de reduzir a população desses fitonematoides abaixo do nível econômico de dano, vem estudando vários métodos de controle, dentre eles o controle biológico. Os organismos utilizados para o controle biológico podem ser introduzidos ou estarem presentes naturalmente no solo, controlando os patógenos da área (29).

No controle biológico de fitonematoides os principais inimigos naturais são os fungos (1515 Manzanilla-Lopez, R.H.; Esteves, I.; Finetti-Sialer, M.M.; Hirsch, P .R.; Ward, E.; Devonshire, J.; Hidalgo-Díaz, L. Pochonia chlamydosporia: Advances and challenges to improve its performance as a biologicalcontrol agent of sedentary endo-parasitic nematodes. Journal of Nematology, v. 45, n. 1, p. 1, 2013.). Os métodos de ação dos fungos contra os nematoides são variados, podendo ser pela colonização do corpo do nematoide, parasitas de ovos e fêmeas, armadilhas, produção de metabólitos tóxicos ao nematoide entre outras (22 Atkins, SD; Hidalgo-Diaz, L; Kalisz, H; Mauchline, TH; Kirsch,PR; Herry, BR. Development of a new management strategy forthe control of root-knot nematodes (Meloidogyne spp.) in organicvegetable production. Pest Management Science, v.59, n.2, p. 183-189, 2003., 1919 Stirling, G. R. Biological control of plant-parasitic nematodes . In: Diseases of nematodes. CRC Press. p. 103-150, 2018, 2222 Xiang, N.; Lawrence, K .S.; DONALD, P. A. Biological control potential of plant growth ‐promoting rhizobacteria suppression of Meloidogyne incognita on cotton and Heteroderaglycines on soybean: A review. Journal of Phytopathology, v. 166, n. 7-8, p. 449-458, 2018.). Em decorrência da dificuldade de emprego de fungos predadores e parasitas no controle de fitonematoides tem surgido como alternativa a utilização de metabólitos fúngicos com propriedades tóxicas a tais fitoparasitas (66 Costa, M.J.N.; Campos,V.P.; Pfenning, L.H.; Oliveira, D.F. Patogenicidade ereprodução de Meloidogyne incognita em tomateiros (Lycopersicon esculentum) com aplicaçãode filtrados fúngicos ou extratos de plantas e de estercos . Nematologia Brasileira, v. 26, n.1, p.5-12, 2002., 77 Costa, M.J.N.; Campos, V.P.; Pfenning, L.H.; Oliveira, DF. Toxicidade de filtrados fúngicos a Meloidogyne incognita. Fitopatologia Brasileira, v.26, n.4, p.749-755, 2001.).

As funções desses produtos são diversas, podem afetar a eclosão, a motilidade e mortalidade de juvenis de segundo estádio desses parasitas (88 Devrajan, K.; Seenivasan, N. Biochemical changes in banana roots due to Meloidogyne incognita infected with Paecilomyces lilacinus. Current Nematology, v.13, n.1, p.1-5, 2002., 99 09. Elad, Y.; Zimmand, G.; Zaqs, Y; Zuriel, S.; Chet, I. Use of Trichoderma harzianum in combination oralternation with fungicides to control cucumber grey mould (Botrytis cinerea) under commercial greenhouse conditions. Plant Pathology, v.42, n.3, p.324-332, 1993., 1313 Liu, T.; Wang, L.; Duan, Y.X.; Wang, X. Nematicidal activity of culture filtrate of Beauveria bassiana against Meloidogyne hapla. World Journal of Microbiology and Biotechnology, v.24,n.1, p.113-118. 2008., 2222 Xiang, N.; Lawrence, K .S.; DONALD, P. A. Biological control potential of plant growth ‐promoting rhizobacteria suppression of Meloidogyne incognita on cotton and Heteroderaglycines on soybean: A review. Journal of Phytopathology, v. 166, n. 7-8, p. 449-458, 2018.).

Neste sentido, o objetivo do trabalho foi observar se filtrados de culturas de fungos sapróbios do semiárido nordestino controlam Meloidogyne javanica em plantas de tomate.

MATERIAIS E MÉTODOS

Os dez isolados de fungos sapróbios do semiárido nordestino utilizados no ensaio (Tabela 1), foram cedidos pelo projeto “Bioprospecção de fungos sapróbios no semiárido nordestino para controle de doenças infecciosas em plantas: indução de resistência (SISBIOTA).

Tabela 1
Descrição dos tratamentos realizados no ensaio de filtrados de culturas de fungos sapróbios do semiárido nordestino no controle de Meloidogyne javanica, Guarapuava, PR.

Para a obtenção do filtrado, discos de 5 cm de diâmetro do meio com a cultura do fungo sapróbio foi transferido para um Erlenmeyer ou um frasco de vidro, ambos autoclavados, contendo meio líquido BD (batata dextrose) composto por batata (200 g) e dextrose (10 g). Adicionou-se 1 disco da colônia do fungo a cada 100 mL de meio BD. Após o preparo, os frascos foram mantidos em sala de crescimento com temperatura controlada (25º±1C) e fotoperíodo de 12 horas, onde foram agitados manualmente por dez segundos de duas a três vezes ao dia para o crescimento do fungo. Após quinze dias, foi realizada a filtragem em papel filtro originando o filtrado fúngico, o qual foi mantido em freezer até o momento de sua utilização.

O inóculo do nematoide que foi utilizado nos ensaios foi obtido de populações puras de M. javanica. A multiplicação da população de nematoides foi realizada em casa de vegetação em plantas de tomateiro “Santa Cruz”. Para a extração de ovos de nematoides das raízes utilizou-se o método descrito por Hussey & Barker (1212 Hussey, RS; Barker, KR. A comparison of methods colleting inocula of Meloidogyne spp. includinga new technique. Plant Disease Reporter, v.57, p.1025-1028, 1973. ), modificado por Boneti & Ferraz (44 Boneti, J.I. S.; Ferraz, S. Modificação do método de Hussey e Barkerpara extração de ovos de Meloidogyne exigua em cafeeiro. Fitopatologia Brasileira, v.6, n.3, p.553, 1981.). A contagem dos ovos para a calibração da suspensão (3.000 ovos por vaso aproximadamente) foi realizada em microscópio estereoscópio, utilizando a câmara de contagem (câmara de Peters).

Para obtenção das mudas de tomateiro, sementes de tomate “Santa Cruz” (Solanum lyconpersicum) foram semeadas em bandejas de isopor com cento e vinte células contendo substrato comercial Plantmax®. Após 25 dias, foi realizado o transplante das mudas para vasos de polipropileno com capacidade para 2,0 L com uma mistura de solo e areia na proporção de 2:1 (v/v), previamente autoclavada, em autoclave vertical a 120ºC por uma hora.

Os ovos foram obtidos de raízes de tomateiros “Santa Cruz” com galhas, cultivados em casa de vegetação, com idade média de 60 dias do transplante da muda do tomate e inoculação dos nematoides. A técnica utilizada para extração dos ovos foi a descrita por Hussey & Barker (1212 Hussey, RS; Barker, KR. A comparison of methods colleting inocula of Meloidogyne spp. includinga new technique. Plant Disease Reporter, v.57, p.1025-1028, 1973. ), modificado por Boneti & Ferraz (44 Boneti, J.I. S.; Ferraz, S. Modificação do método de Hussey e Barkerpara extração de ovos de Meloidogyne exigua em cafeeiro. Fitopatologia Brasileira, v.6, n.3, p.553, 1981.).

A obtenção de juvenis de segundo estádio (J2) de M. javanica foram preparadas câmaras de eclosão pela metodologia do funil de Baermann, descrito por Freitas et al. (1111 Freitas, L.G.; Neves, W.S .; Oliveira, R.D´ARC L. Métodos em nematologia vegetal. In : afenas, AC; Mafia, RG. (ed.). Métodos em fitopatologia. Viçosa, MG : UFV, 2007. cap.11, p.253-291.). Para tanto, utilizou-se papel filtro para café para que os J2 viáveis passassem pelos poros do mesmo, decantassem e fossem recolhidos na suspensão final após 48 horas.

Para a atividade de filtrados de fungos sapróbios sobre a eclosão de juvenis de M. javanica, colocou-se 100 μL da suspensão contendo 250 ovos aproximadamente, juntamente com 500 μL de um dos tratamentos, sendo que se utilizou duas testemunhas, em uma foi adicionado a suspensão com ovos somente água destilada estéril (500 μL) e na outra testemunha adicionou-se a suspensão de ovos 500 μL de meio de cultura BD). Os tubos foram mantidos em câmaras de crescimento, por 15 dias a temperatura de 25º±1C, no escuro. No décimo sexto dia avaliou-se o número de J2 eclodidos por tratamento com auxílio de microscópio óptico invertido e câmara de contagem de nematoides de Peters, o experimento foi repetido duas vezes.

Na avaliação do efeito dos filtrados na motilidade e mortalidade de juvenis de M. javanica, foram colocados 500 µL do filtrado de cada sapróbio e 50 µL de uma suspensão de com 150 J2 de M. javanica em tubos de ensaio os tratamentos. Os tubos foram vedados com filme plástico e colocados em câmara de crescimento a 25º±1C no escuro. Após 48 horas, realizou-se a avaliação, com auxílio de microscópio biológico de objetiva invertida, do número de J2 imóveis (não se movimentavam ou apresentavam o corpo com aspecto retilíneo ou retorcido), tendo a avalição de mortalidade sido realizada conforme metodologia descrita por Chen & Dickson (55 Chen, S. Y.; Dickson, D.W. A technique for determining live second- stage juveniles of Heterodera glycines. Journal of Nematology, v.32,n.1, p.117-121, 2000.), em que espécimes que permaneceram imóveis após a adição de uma gota de NaOH 1 N à suspensão de nematoides foram classificados como mortos.

Nos experimentos conduzidos em casa de vegetação foram feitos em dois períodos (dezembro de 2015 a fevereiro de 2016 e março de 2016 a maio de 2016), ambos com durabilidade de 60 dias. No primeiro período, dezembro/2016 a fevereiro/2016, foi composto de doze tratamentos com oito repetições cada, sendo dez tratamentos com diferentes filtrados de isolados fúngicos, uma testemunha água e uma testemunha meio líquido BD (batata dextrose) (Tabela 1). No segundo período, adicionou controle biológico (Pochonia chlamydosporia (Rizotec®) e químico Avermectina (Vertimec®), desta forma, no segundo período totalizou 14 tratamentos com oito repetições cada, sendo cada repetição constituída por uma planta.

Em vasos de 2,5 litros contendo uma mistura de solo e areia autoclavados por uma hora a 120ºC na proporção 2:1 (v/v). Cada vaso foi transplantado uma muda de tomate “Santa Cruz” com 25 dias de idade e inoculado aproximadamente 3000 ovos de M. javanica.

Os tratamentos foram adicionados ao solo (20 mL), aplicados a cada 15 dias, totalizando quatro aplicações durante todo o experimento. A primeira aplicação dos tratamentos ocorreu no dia da infestação com os ovos de M. javanica, sendo que após sete dias da infestação do solo com o nematoide transplantou-se uma muda de tomate em cada vaso.

Em todos os tratamentos e nos dois períodos do experimento (primeira e segunda época) a manutenção da umidade do solo antes do transplante das mudas foi realizada por regas com auxílio de um regador uma ou duas vezes ao dia. As mudas, permaneceram em casa de vegetação. Após 60 dias da inoculação das plantas de tomateiro, avaliou-se as seguintes variáveis: altura de parte aérea, com o auxílio de uma fita métrica e medindo do colo ao meristema apical; o diâmetro do caule, utilizando um paquímetro digital, em que a medição era feita a três cm da superfície do solo; peso fresco parte aérea e raízes, cortando as plantas com tesoura de poda na parte inferior do caule, rentes ao solo e toda a parte aérea e raízes separadamente foram pesada em balança semi-analítica, imediatamente após o corte; peso seco da parte aérea, cada planta foi acondicionada em sacos de papel identificados e levados à estufa de circulação forçada de ar a 70 ºC por 48 horas, até atingirem peso constante. Após secas, as amostras foram retiradas e esperou-se até que atingissem a temperatura ambiente. Em seguida, foram pesadas em balança semi-analítica para a determinação do peso da matéria seca; contagem do número de galhas, e a quantificação de número de ovos por sistema radicular foi realizada utilizando a metodologia descrita por Rocha et al. (1717 Santiago, D.C.; Homechin, M.; Silva, J.F.V.; Ribeiro, E.R.; Gomes, B.C.; Santoro, P.H. Seleção de isolados de Paecilomyces lilacinus (Thom.) Samson paracontrole de Meloidogyne paranaensis em tomateiro. Ciência Rural, v.36, n.4, p.1055-1064, 2006.).

Para os experimentos in vitro adotou-se delineamento experimental inteiramente casualizado (DIC) enquanto que os experimentos em casa de vegetação foi blocos ao acaso. Os experimentos de eclosão, mortalidade, motilidade e no primeiro período do ensaio em casa de vegetação foram compostos de 12 tratamentos e cinco repetições. No segundo período do ensaio em campo foram 14 tratamentos e cinco repetições.

Os resultados obtidos em todos os experimentos foram submetidos a análise estatística utilizando o programa estatístico Assistat versão 7.5 beta (1818 Silva, FAS; Azevedo, CAV. Principalcomponents analysis in the software Assistat-Statistical Attendance. In: WorldCongress on Computers in Agriculture, 7., 2009, Reno. Proceeding. Reno : American Society of Agricultural and Biological Engineers, 2009. 1 CD -ROM). Os dados dos ensaios in vivo foram submetidos ao teste de média Scott e Knott (1974) ao nível de 5%.

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Os resultados obtidos demonstraram que os filtrados dos dez fungos testados apresentaram efeito na eclosão de J2 de M. javanica diferindo das testemunhas (Tabela 2). Contudo os tratamentos S. globosa, S. chartarum, G. macrocladum, L. lageniforme, C. eragrotidis, M. leucotrichum e B. portoricensis apresentaram melhores resultados, com redução na eclosão de J2 variando de 93,6% a 100%, diferindo estatisticamente dos demais (Tabela 2). Resultados semelhantes foram obtidos por Barros et al. (33 Barros, D.C.M.; Fonseca, I.C.B.de.; Balbi-Peña, M.I.; Pascholati, S.F.; Peitl, D. C. Biocontrol of Sclerotinia sclerotiorum and white mold of soybeanusing saprobic fungi from semi-arid areas of Northeastern Brazil. Summa Phytopathologica, v. 41, p. 251-255, 2015.) que estudaram o efeito dos fungos sapróbios Curvularia eragrotidis, C. inaequalis, Pithomyces chartarum, Myrothecium sp., Stachybotrys globosa, Memnoniella echinata, M. levispora, Stachylidium bicolor sobre Sclerotinia sclerotiorum e observaram o antagonismo de Myrothecium sp. sobre o referido patógeno, reduzindo 14% o crescimento micelial do fungo.

Tabela 2
Efeito dos diferentes filtrados fúngicos de isolados de fungos sapróbios do semiárido Nordestino sobre a diminuição da porcentagem de eclosão de J2 de Meloidogyne javanica. Guarapuava, Paraná.

O efeito dos filtrados fúngicos na mobilidade e mortalidade dos J2 de M. javaniva estão representados na Tabela 3. Os filtrados dos fungos S. chartarum, G. macrocladum e L. lageniforme não reduziram a mobilidade dos juvenis, porém, esses mesmos tratamentos causaram respectivamente 71,6%, 74,8% e 59,5% de mortalidade de J2. Os filtrados dos fungos P. hispidula, B. portoricensis e D. obeispora reduziram significativamente a mobilidade dos juvenis, tendo esta porcentagem de imobilidade superior a das testemunhas. Todos os filtrados estudados afetaram positivamente a mortalidade dos juvenis, diferindo estatisticamente da testemunha água, mas se igualando a testemunha meio BD.

Nos ensaios realizados em casa de vegetação para as variáveis altura de planta, massa fresca de parte aérea, massa seca de parte aérea, diâmetro do caule e peso fresco de raiz não apresentaram diferença estatística entre os tratamentos no primeiro e no segundo período.

Em relação ao número de ovos de M. javanica por sistema radicular, os resultados obtidos demonstram o potencial dos filtrados fúngicos de sapróbios do semiárido Nordestinos, C. eragrotidis, P. hispidula, M. leucotrichum e B. portoricensis os quais diminuíram o número de ovos do nematoide por sistema radicular, reduzindo em 85,8%, 78,2%, 86,1% e 96,9%, respectivamente, diferindo estatisticamente dos demais tratamentos, no primeiro período (Tabela 4).

Tabela 3
Efeito dos diferentes fitrados fúngicos de fungos sapróbios do semiárido Nordestino na mortalidade e mobilidade de J2 de Meloidogyne javanica. Guarapuava, Paraná.
Tabela 4
Efeito dos diferentes fitrados fúngicos de fungos sapróbios do semiárido Nordestino no número de ovos de Meloidogyne javanica por sistema radicular. Guarapuava, Paraná.

Os resultados obtidos no segundo período em casa de vegetação demonstraram que os filtrados dos isolados fúngicos C. inaequalis, C. eragrotidis, P. hispidula, M. leucotrichum e B. portoricensis reduziram o número de ovos por sistema radicular significativamente, igualando-se ao resultado obtido com o tratamento químico (Avermectina), diferindo estatisticamente dos demais tratamentos (Tabela 4). Os filtrados fúngicos dos sapróbios S. chartarum e G. macrocladum não reduziram o número de ovos significativamente, apresentando médias que não diferiram estatisticamente do tratamento testemunha somente com água. Poucos são os estudos realizados com filtrados obtidos de fungos sapróbios do semiárido Nordestino no controle de nematoides. No entanto Al-Shammari et al. (11 Al-Shammari, T.A.; Bahkali,A.H.; Elgorban, A.M.; El-Kahky, M.T.; Al- Sum, B.A. The use of Trichoderma longibrachiatum and Mortierella alpina against root-knot nematode, Meloidogyne javanica on tomato. Journal of Pure and Applied Microbiology, v. 7, p. 199-207, 2013.), com o objetivo de testar filtrados de Trichoderma longibrachiatum e Mortierella alpina em diferentes concentrações no controle de nematoide, observaram eficiente controle de M. javanica com todos os tratamentos, tanto em experimento in vitro quanto in vivo, resultando em diminuição do número de ovos por sistema radicular, número de massa de ovos por sistema radicular e número de galhas por sistema radicular.

O efeito antagônico de alguns filtrados de fungos do semiárido Nordestino também foi observado no número de galhas por sistema radicular (Tabela 5). No primeiro ensaio todos os filtrados de isolados fúngicos controlaram significativamente o número de galhas nas raízes, destacando-se o filtrado do fungo C. eragrotidis que reduziu o número de galhas em 66,6% quando comparado com a testemunha.

Tabela 5
Efeito dos diferentes fitrados fúngicos de fungos sapróbios do semiárido Nordestino no número de galhas de Meloidogyne javanica por sistema radicular. Guarapuava, Paraná.

No segundo experimento todos os filtrados de isolados fúngicos se mostraram mais eficientes na diminuição de número de galhas quando comparados a testemunha. Neste ensaio pode-se observar que os filtrados fúngicos dos isolados C. inaequalis, L. lageniforme e D. obeispora foram os que tiveram o maior controle do número de galhas por sistema radicular, sendo inferiores somente ao tratamento químico. O filtrado fúngicos do isolado C. inaequalis diminuiu em 72,02 %, o filtrado do isolado do fungo L. lageniforme diminuiu em 64,27% e o filtrado fúngico do isolado D. obeispora diminuiu 63,56% o número de galhas de M. javanica por sistema radicular. Estudos realizados por Zareen et al. (2323 Zareen, I.A.M.; Zaki, M.J. Effect of fungal filtrates of Aspergillus species ondevelopment of root-knot nematodes and growth of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.). Pakistan Journal of Biological Sciences, v.4, n .8, p.995-999, 2001.) em tomateiros infectados com M. javanica e tratados com filtrados de sete diferentes espécies de Aspergillus em condições de casa de vegetação, demonstraram potencial de biocontrole dos filtrados fúngicos sob o nematoide avaliado. Neste estudo, os autores puderam observar que A. niger, A. fumigatus e A. terreus obtiveram redução máxima na formação de galhas e na produção de massa de ovos do referido nematoide.

Os filtrados fúngicos diminuíram a eclosão, reduziram mobilidade e mortalidade de J2 de M. javanica.

Os filtrados obtidos dos fungos sapróbios do Semiárido Nordestino não interferiram no desenvolvimento das mudas de tomate.

Os filtrados dos fúngicos também reduziram o número de ovos e galhas de M. javanica por sistema radicular das mudas de tomate.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

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Editado por

Editor associado para este artigo: Wagner Betiol

Datas de Publicação

  • Publicação nesta coleção
    01 Jul 2024
  • Data do Fascículo
    2024

Histórico

  • Recebido
    02 Jul 2018
  • Aceito
    24 Jun 2023
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